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酸枣叶片不定植株的诱导 总被引：9，自引：0，他引：9
从酸枣实生苗叶片获得再生不定植株，在ＷＰＭ附加ＴＤＺ２．０ｍｇ．ｌ＾－１和ＩＡＡ０．５ｍｇ．ｌ＾－１的培养基上获得了４７．６％的不定梢再生率。不定梢转移到培养基ＭＳ＋ＢＡ０．５ｍｇ．ｌ＾－１上增殖，在１／２ＭＳ＋ＩＢＡ０．３ｍｇ．ｌ＾－１＋蔗糖２％培养基上诱导生根，仅获得１３．１％的生根经。 相似文献
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西瓜组织培养再生体系的比较研究 总被引：9，自引：0，他引：9
西瓜未成熟子叶和幼苗子叶是西瓜组织培养的适宜外植体,改良的ＭＳ＋ＢＡ２．２５２６ｍｇ／Ｌ培养基是未成熟子叶和幼苗子叶不定芽诱导的适宜培养基,不定芽生长则需将ＢＡ浓度降至１．１２６３ｍｇ／Ｌ。Ｍｉｌｌｅｒ＋ＩＡＡ０．５ｍｇ／Ｌ是诱导生根的最佳培养基。 相似文献
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‘艾西丝’南瓜子叶的离体培养 总被引：17，自引：0，他引：17
用‘艾西丝’南瓜子叶作外植体离体培养,成功地建立了一套子叶高频率诱导再生芽的程序。在ＭＳ＋ＢＡ ４．０ｍｇ／Ｌ＋ＩＡＡ０．４ｍｇ／Ｌ的培养基上,以４ｄ苗龄子叶基部切块为外植体,其不定芽的诱导率最高,达５０％,在ＭＳ＋ＢＡ０．２５－０．５ｍｇ／Ｌ的培养基上继代,增殖培养效果较好,在无激素的１／２ＭＳ培养基上最易生根。 相似文献
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山杏原生质体培养再生植株 总被引：22，自引：0，他引：22
对影响山杏原生质体分离和培养的因素进行了系统研究。以悬浮培养物为分离材料,在ＣＰＷ＋１．５％ＣｅｌｕｌａｓｅＯｎｚｕｋａＲ－１０＋０．５％ＭａｃｅｒｏｚｙｍｅＲ－１０＋０．５％Ｈｅｍｉｃｅｌｕｌａｓｅ＋０．６ｍｏｌ／Ｌ甘露醇＋１％ＰＶＰ的酶解液中酶解１０ｈ,原生质体产量和活力分别达到８×１０６个／ｇＦＷ和９５％。以ＫＭ８Ｐ为基本培养基,在培养初期加２,４－Ｄ１．０、ＢＡ０．２５ｍｇ／Ｌ,培养１０ｄ和３０ｄ后分别将ＢＡ调至０．５和１．０ｍｇ／Ｌ,以０．５５ｍｏｌ／Ｌ山梨醇调节渗透压,培养过程中逐步降压,在０．５×１０５个／ｍＬ的植板密度下液体浅层培养６０ｄ后形成了微愈伤组织。将微愈伤组织转至固体培养基上继代培养,在分化培养基上分化出不定芽,在生根培养基上生根形成完整植株。 相似文献
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甜瓜组织培养再生体系的比较研究 总被引：26，自引：1，他引：25
甜瓜未成熟子叶,幼苗子叶和真叶都是甜瓜组织培养的适宜外植体。改良的Ｍｉｌｌｅｒ＋ＺＴ３ｍｇ／Ｌ＋ＩＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ培养基是甜瓜未成熟子叶和幼苗子叶不定芽诱导的适宜培养然,幼苗真叶的不定芽诱导则需将ＺＴ浓度增至６ｍｇ／Ｌ。改良的Ｍｉｌｌｅｒ或改良的ＭＳ添加ＢＡ０．２２５ｍｇ／Ｌ培养和基和改良的Ｍｉｌｌｅｒ或ＭＳ添加ＩＡＡ０．２－０．５ｍｇ／Ｌ培养基分别不定芽生长和诱导生根的适宜培养基。 相似文献
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西洋梨“丰产”叶片不定梢再生 总被引：13，自引：0，他引：13
以西洋利品种“丰产”试管苗叶片为外植体,研究了不同培养基及乙烯抑制剂ＡｇＮＯ３对叶片不定梢再生的影响。在ＮＮ６９＋ＢＡ５ｍｇ／Ｌ＋ＩＡＡ０．３ｍｇ／Ｌ培养基上,暗培养３周我下培养,获得了最高不定梢再生率,达１００％。ＡｇＮＯ３结叶片不定梢再生也表现咄促进作用。在不加ＡｇＮＯ３的ＭＳ＋ＢＡ５ｍｇ／Ｌ＋ＩＡＡ０．３ｍｇ／Ｌ培养基上暗培养３周,再生率仅为２０％,附加ＡｇＮＯ３０．１ｍｇ／Ｌ,再生率可达５ 相似文献
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通过组织培养，蜂斗叶（ＰｅｔａｓｉｔｅｓｊａｐｏｎｉｃｕｓＭｉｑ．）的叶柄和地下茎切段在ＭＳ＋ＢＡ２ｍｇ／Ｌ的分化培养基上诱导出愈伤组织，并进一步分化出芽丛，切下２～３ｃｍ高的芽，移入１／２ＭＳ＋ＮＡＡ０．１ｍｇ／Ｌ的生根培养基中，生根率达１００％。以再生苗的叶片或叶柄为外植体，在分化培养基上很快便可再形成愈伤组织并分化出芽。 相似文献
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以不同基因型材料的西瓜品种为试材,用ＭＳ、Ｍｉｌｌｅｒ、Ｎ６与不同激素配比的培养基,初步建立了西瓜离体组培再生体系。结果表明,不同浓度的ＭＳ培养基均可长出无菌苗,但随着ＭＳ培养基营养元素浓度的增大,无菌苗生长发育受到延迟和抑制作用加强,其中以 １／２ ＭＳ＋ ０．５～２ ｍｇ／Ｌ ＢＡ＋ ０． ｍｇ／Ｌ ＮＡＡ长出的无菌苗作外植体诱导愈伤组织最快,改良的 ＭＳ（ＭＳＩ＋ ２ ｍｇ／Ｌ ＢＡ＋０．１ｍｇ／ＬＮＡＡ）是西瓜愈伤组织诱导的最适培养基,改良的ＭＳ（ＭＳＩ＋２ｍｇ／ＬＢＡ＋０．１ｍｇ／ＬＮＡＡ＋５ ｍｇ／ＬＡｇＮＯ３）是外植体诱导分化不定芽的最适培养基,离子束等物理因子处理愈伤组织发现对诱导分化不定芽具有刺激和促进作用。 相似文献
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甜樱桃砧木吉塞拉(Gisela)叶片再生体系研究 总被引：9，自引：0，他引：9
以甜樱桃矮化砧木‘Gisela 5’和‘Gisela 6’的组培苗为试材，研究建立叶片的离体再生体系。结果表明，Gisela 6的再生能力高于Gisela 5；叶片正面接触培养基比背面接触培养基更有利于分化再生。用新梢顶端1~3节新展开的叶片制备外植体，分别接种在WPM+BA 7 mg/L+IBA 0.3 mg/L和WPM+BA 5 mg/L+IBA 0.5 mg/L的培养基上，黑暗处理15 d，Gisela 5的最高分化频率为75.1%，Gisela 6为100%。再生芽苗在三角瓶中生根容易，移人大田后生长正常。 相似文献
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地被月季‘Royal Bassino’高频再生体系的建立 总被引：7，自引：0，他引：7
以地被月季‘RoyalBassino’为试材, 进行了组培快繁和外植体再生条件的研究。结果表明,以带有腋芽的茎段为外植体, MS中添加6-BA 1.5 mg/L和IBA 0.1 mg/L 为最适诱导培养基, 诱导出芽率100%; MS中添加6-BA 0.5 mg/L和IBA 0.05 mg/L可以获得最高增殖倍数(6.3) ; 而添加IBA 0.01 mg/L的1/2MS为最佳生根培养基, 生根率92%。试管苗经7 d驯化后, 移栽成活率在99%以上。分别以叶柄、叶盘和茎段为外植体进行再生培养, 以MS为基本培养基, 叶柄在添加噻苯隆(TDZ) 7μmol /L的诱导培养基中暗培养10 d后, 转接到添加6-BA 0.5 mg/L的再生培养基中光照培养约20 d, 可以获得57.1%的芽再生率。 相似文献
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大白菜高频再生体系的建立及策略 总被引：11，自引：2，他引：11
就北方大白菜14个基因型进行组织培养再生比较, 以筛选出的较高再生率的基因型为试材,在含不同配比的6-BA、TDZ、NAA及AgNO3、GA3、ABA的培养基中进行再生比较, 分别建立了含有6-BA和TDZ的大白菜组织培养再生最佳培养基: MS + 6-BA 5 mg/L +NAA 0.5 mg/L +AgNO3 2 mg/L和MS + TDZ0.1 mg/L + 6-BA 5 mg/L +NAA 0.5 mg/L +AgNO3 2 mg/L +ABA 0.25 mg/L, 大白菜再生频率最高可以达到90.6% , 建立了大白菜高频再生体系, 讨论分析了影响大白菜再生的主导因素并提出建立大白菜高频再生体系的可行策略。 相似文献
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秋水仙素诱导樱桃矮化砧木'吉塞拉6号'获得六倍体再生植株 总被引：2，自引：0，他引：2
以三倍体樱桃矮化砧木'吉塞拉6号'（Prunus ceransus × P. canescens）的离体叶片为外植体,采用秋水仙素诱导处理再生出六倍体植株。将外植体首先在加有秋水仙素（50 mg. L-1）、生长素（IBA 0.5 mg. L-1）和细胞分裂素（BA 5.0 mg. L-1）的改良WPM液体培养基中培养5 d,再转移到不含秋水仙素（其它成分相同）的固体培养基上继续培养56 d,再生出形态变异明显的新梢。采用流式细胞仪鉴定染色体倍性,确定其为六倍体新梢。六倍体植株与三倍体的'吉塞拉6号'植株形态学上有明显差异。六倍体的试管苗已在大田移栽成活,并已成功高接在甜樱桃大树上。 相似文献
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以姜黄无菌芽的芽基为外植体,进行愈伤组织的诱导和无菌苗再生的研究。结果表明:在MS培养基中添加2,4-D或2,4-D与6-BA的激素组合能够诱导外植体的切口部位产生愈伤组织,但愈伤生长缓慢;在2,4-D和6-BA的激素组合中再加入TDZ,愈伤组织能够不断增殖生长:在MS+0.5mg/L TDZ+0.5mg/L BA+0.3mg/L 2,4-D培养基中,愈伤的诱导率和生长量最高,诱导率达到80%,每个月愈伤生长量为148.6mg;愈伤组织再分化出芽的适宜培养基为MS+0.5mg/L TDZ+2.0mg/L BA+0.2mg/L NAA,再分化率为90%,外植体的平均出芽数为5.1。当试管苗长至5cm时出瓶移栽,成活率可达90%以上。 相似文献
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甜樱桃砧木离体叶片愈伤组织诱导及不定芽再生 总被引：5，自引：5，他引：5
叶片再生效率的高低直接影响目的基因转化的成功率,为建立稳定、高效的樱桃不定芽离体再生体系,以30～40d苗龄的甜樱桃砧木ZY-1的组培继代苗为试材,取上部幼嫩叶片或不含腋芽的茎段,分别从培养基生长调节剂配比、接种材料类型、叶片接种部位、接种方式以及培养条件等方面进行了不定芽再生技术研究。结果表明,培养基中添加7.0mg/L的6-BA与0.5～1.0mg/L的IBA配比时不定芽再生率和出芽数均较高,TDZ和NAA不适于诱导ZY-1叶片再生不定芽;接种继代苗茎段比叶片再生率高;接种叶片以选择嫩叶横切2刀、远轴面向下接触培养基的方式为好;叶片不同部位处理以带叶柄的基部叶块最易再生;叶片接种后在25℃室温条件下,先暗培养3周再照光,利于不定芽的再生。 相似文献
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扎米莲( Zamioculcas zamiifolia) 叶片的植株再生 总被引：4，自引：0，他引：4
建立了从扎米莲叶片直接再生植株的有效方法。结果表明, 扎米莲叶片外植体在仅加6-BA 或NAA 或2 ,4-D 的培养基中培养8 周后都不能产生幼芽; 但在含不同浓度6-BA (1.0～2.0 mg/L) 和NAA(0.02～0.2 mg/L) 组合的MS 培养基上培养3 周后开始产生幼芽, 其幼芽分化的最佳培养基为MS + 6-BA 2.0 mg/L + NAA 0.02 mg/L。再生芽在添加IBA 0.5 mg/L 的MS 培养基中生根。 相似文献