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利用 NLFK 细胞通过静置培养与转瓶培养作猫泛白细胞减少症病毒(FPLV)和水貂肠炎病毒(MEV)增殖培养比较表明:(1)NLFK 细胞株生命力强,单层长成时间较短,繁殖速度较快.适用于转瓶培养;(2)无论FPLV 或 MEV 均可利用 NLFK 细胞进行转瓶增殖培养,而且转瓶培养毒液的 HA 价比静置培养毒高出3～4个滴度;(3)无论 FPLV 或 MEV 在 NLFK 细胞增殖培养时,都可作两次增殖培养收获,其二次收获的 HA 价并不比一收的低。由此可见,转瓶培养法对猫源或貂源细小病毒疫苗生产都是适用的. 相似文献
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本研究旨在探索水貂肠炎病毒（mink enteritis virus,MEV）的母源抗体消长规律及其亚单位疫苗免疫效果。以免疫母貂所生仔貂为研究对象,采集21、30、45、60日龄仔貂血清,测定水貂病毒性肠炎母源抗体HI效价（MEV HI）;选取25只47~52日龄健康水貂接种制备MEV基因工程亚单位疫苗,免疫前后14 d采血测定MEV HI效价;免疫后14 d进行水貂肠炎病毒攻毒临床症状观察,并测定粪便HA效价;攻毒后14 d对濒死和存活水貂安乐死,采集十二指肠、空肠和回肠进行病理组织学观察和免疫组化检测。结果显示,免疫母貂所产仔貂的MEV HI效价随着日龄的增加逐渐降低,在21日龄时较高,45日龄时少部分仔貂MEV HI效价<1：32,60日龄时大部分仔貂HI效价≤ 1：4;使用制备合格疫苗免疫后14 d对照组水貂的MEV HI效价均不高于1：4,免疫组MEV HI效价升高至1：64~1：512;攻毒保护试验表明,免疫组水貂100%抵抗水貂肠炎病毒强毒的攻击,水貂的精神、饮食、粪便等均未见异常,且攻毒后粪便HA效价为1：8~1：16;病理组织学和免疫组化检测结果表明,MEV基因工程亚单位疫苗能够很好地阻止病毒在肠黏膜上皮细胞的复制和对肠黏膜上皮细胞的损伤。因此,免疫母貂所生仔貂21日龄时体内抗体效价最高,制备的疫苗免疫50日龄左右的水貂时能够突破母源抗体干扰并产生高水平的抗体,能够抵抗水貂肠炎病毒强毒株的攻击。 相似文献
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正犬瘟热和水貂病毒性肠炎是在毛皮动物养殖业中广泛流行的两类急性、接触性传染病,病原分别是犬瘟热病毒(CDV)和水貂肠炎病毒(MEV)。疫苗接种是主要的预防手段[1-2]。但当前市售MEV灭活苗更新速度慢、灭活剂致癌,不能诱导细胞免疫反应;CDV弱毒苗易受母源抗体干扰,存在一过性免疫抑制、返祖散毒等问题[2-4]。因此,笔者设计了安全、特异性高的CDV-MEV二联多表位抗原,并对其免疫效 相似文献
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张德礼 《中国预防兽医学报》1992,(3)
用8HA单位水貂肠炎病毒(MEV)细胞培养活毒标准抗原、8 HI单位兔抗MEV血清标准抗体、0.5％戊二醛化猪RBC进行微量血凝(HA)-血凝抑制(HI)试验诊断水貂病毒性肠炎(MVE),具有敏感、准确、简便、省时等特点,适于MVE的确诊、检疫、流行病学调查和免疫水平监察,可在接到病料后4小时内报告结果。因本试验只能用活毒标准抗原,所以需把好消毒关。防止散毒。 相似文献
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水貂病毒性肠炎,目前已成为我国水貉三大疫病之首,每年为了预防和紧急接种需要大量水貂病毒性肠炎脏器灭活苗。但如何保证疫苗的质量,保证其安全有效,是现在急需解决的问题。例如水貂病毒性肠炎脏器灭活苗的最小免疫量、免疫产生期、免疫期、疫苗的检验标准及疫苗的保存条件等均没有系统的研究和报导,尤其是缺乏一个水貂病毒性肠炎脏器灭活苗的制造及检验规程。为了填补这方面的空白,我们开展了本项课题的研究。现将研究结果摘要报导如下: 1、分离出一株具有良好免疫原性及抗原性的水貂肠炎病毒,定名为MEV—DL1。此毒株给水貂肠炎脏器灭活苗的研究打下了可行的基础。 1)MEV—DL1种毒的效价为1024×(HI 相似文献
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用微量血凝和血凝抑制试验诊断水貂病毒性肠炎 总被引：2，自引：0，他引：2
用8HA单位水貂肠炎病毒（MEV）细胞培养活毒标准抗原、8HI单位兔抗MEV血清标准抗体、0．5％戊二醛化猪RBC进行微量血凝（HA）－血凝抑制（HI）试验诊断水貂病毒性肠炎（MVE），具有敏感、准确、简便、省时等特点，适于MVE的确诊、检疫、流行病学调查和免疫水监察，可在接到病料后4小时内报告结果，因本试验只能活毒标准抗原，所以需好消毒关，防止散毒。 相似文献
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张德礼 《中国预防兽医学报》1992,(4)
将水貂病毒性肠炎细小病毒(MEV)无血清细胞培养灭活铝胶疫苗接种6只小鼠(腹腔0.5ml/只)、6只豚鼠(皮下1～2ml/只.1～2次)、6只家兔(皮下1～3ml/只,2～3次).4只貉子(皮下3ml/只)和32只水貂(皮下或肌肉1～2ml/只,1～2次),以5只未注苗貂为阴性对照、3只人工感染 MEV 强毒貂为阳 相似文献
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张德礼 《中国预防兽医学报》1991,(1)
维持液中不加血清不降低 MEV 在猫肾细胞系(F_(81)株和 C_(81)株)上的培养效价。MEV 在 C_(81)株猫肾细胞系上培养特性(HA 和 CPE)的变化规律不因维持液中不加血清而受影响.应用无血清维持液在猫肾细胞系上长期传代培养 MEV,病毒的高增殖率和强免疫原住不受影响,未发现有不良的远期效应出现。MEV 培养的无血清维持液用于病毒抗原的大批量生产取得成功,为研制安全性更高的细小病毒疫苗奠定了基础,为组织培养细小病毒的纯化和精制提供了方便. 相似文献
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《上海畜牧兽医通讯》2015,(3)
<正>水貂细小病毒性肠炎(Mink parvoviral enteritis),又称水貂传染性肠炎(Mink infectious enteritis),是由细小病毒科、细小病毒属的水貂肠炎病毒(Mink enteritis virus,MEV)引起的患貂以剧烈腹泻为主要临床特征的急性、烈性、高度接触性和高致死性传染病。该病是世界公认的危害养貂业较严重的病毒性传染病之一,给水貂养殖业造成了巨 相似文献
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水貂病毒性肠炎 总被引：1，自引：0，他引：1
廖国安 《中国预防兽医学报》1990,(2)
水貂病毒性肠炎(Mink viral enteritis)是由水貂肠炎病毒引起的以高热、呕吐、剧烈腹泻为特征的高度接触性传染病。该病于1942～1952年间,在加拿大的许多水貂场严重流行。当时通过粪便滤液的人工感染试验,证实是一种病毒性传染病,由C.Wills分离鉴定了病原,并命名为水貂肠炎病毒(Min’s enteritis viras,MEV)。之后,美国、丹麦、瑞典、荷兰、英国、法 相似文献
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为评价水貂病毒性肠炎杆状病毒载体灭活疫苗(简称MEV亚单位疫苗)与水貂犬瘟热活疫苗(简称CDV活疫苗)混合免疫的效果,本研究将两种疫苗混合后在室温静置不同时间测定犬瘟热病毒(CDV)含量,并选用30只健康水貂随机分为6组进行比对试验,其中G1和G2组免疫MEV亚单位疫苗稀释CDV活疫苗的混合疫苗,G3组为CDV活疫苗单独免疫组,G4组为MEV亚单位疫苗单独免疫组,G5和G6组分别为CDV攻毒组和MEV攻毒组。免疫后21 d采血检测CDV中和抗体,同时对G1、G3、G5组进行CDV攻毒;免疫后14 d采血检测MEV血凝抑制(HI)抗体,同时对G2、G4、G6组进行MEV攻毒。结果：两种疫苗混合后在室温静置2 h, CDV含量无明显下降。免疫后21 d, G1和G3组CDV中和抗体效价达到1∶64.6～1∶128.8,CDV攻毒后混合疫苗和CDV活疫苗免疫组的保护率均为100%。免疫后14 d, G2和G4组的MEV HI抗体效价达到1∶128～1∶1 024,MEV攻毒后混合疫苗和MEV亚单位疫苗免疫组的保护率均为100%。研究表明,MEV亚单位疫苗稀释CDV活疫苗,混合免疫后各疫苗的免... 相似文献
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为了鉴定从蓝狐粪便中分离的病毒是否为细小病毒,试验采用病毒培养、电镜观察、中和试验、间接免疫荧光试验和分子生物学试验对其进行鉴定。结果表明:分离毒株在F81细胞中培养96 h后出现细胞病变(CPE);电镜观察可见直径为20 nm左右的病毒粒子;该病毒能被水貂肠炎细小病毒(MEV)阳性血清中和;PCR检测可扩增得到大小为570 bp的特异性条带,并证明分离毒株为细小病毒,将其命名为BFPV-HeB05/16;VP2全基因遗传进化与氨基酸序列分析显示,分离毒株BFPV-HeB05/16与MEV和BFPV处在同一分支上,具有较高的同源性,其关键氨基酸位点(80,300,426,564,568位)与BFPV和MEV保持一致。 相似文献
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本试验从疑似细小病毒感染的病死水貂中分离到1株病毒。经PCR鉴定、细胞培养、蛋白质电泳鉴定最终确定为水貂肠炎细小病毒(MEV),命名为MEV-WFD。对该分离病毒的衣壳蛋白VP2基因进行克隆测序分析,结果表明此病毒VP2基因3处碱基发生点突变,其中一处的突变导致第328处氨基酸残基由疏水性丙氨酸(Ala)变为亲水性苏氨酸(Thr)。将此株病毒VP2基因与GenBank上公布的所有MEV的VP2基因碱基序列进行同源性比较及进化树分析,结果表明该病毒与ZYL-1、MEV/LN/-10和Manzhouli的VP2基因同源率最高,为99.8%;进化树构建结果表明,该病毒与6株已公布的病毒属于同一进化分支。 相似文献