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白掌的离体快速繁殖初探 总被引：1，自引：0，他引：1
以白掌带顶芽或腋芽茎段，进行组培试验，研究表明：适合诱导培养基为1／2MS＋6-BA3．0mg／L，诱导率为100％；适合不定芽增殖培养基为Ms＋6-BA4mg／L＋NAA0．5mg／L，适合生根诱导培养基为1／2MS＋NAA1．0mg／L或1／2MS＋IBA1.0mg／L，生根率可达90％以上；继代过程中次数多了会出现玻璃化现象，而6-BA浓度4或0．5mg／L的交替使用有效减低玻璃化的发生，也有利于芽苗的增殖。 相似文献
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以绿巨人带顶芽或腋芽进行组培繁殖，研究表明：适合诱导培养基为1／2MS＋6-BA3．Omg／L，诱导率为90％；适合不定芽增殖培养基为Ms＋6-BA4mg／L＋NAA0．5mg／L；适合分化培养基为Ms＋6-BA0．5mg／L＋IBA0．1mg／L；适合生根诱导培养基为1／2MS＋NAA1．0mg／L或1／2MS＋IBAl．0mg／L，生根率可达90％以上；继代过程中次数多了会出现玻璃化现象，而6-BA浓度4或0．5mg／L与NAA0．5mg／L组合的交替使用可有效降低玻璃化的发生，也有利于芽苗的增殖； 相似文献
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文心兰茎尖及花梗离体培养研究 总被引：1，自引：0，他引：1
文心兰茎尖和花梗用MS 6-BA2mg／L NAA0．2mg／L培养基，同时分化芽和原球茎。6-BA低浓度促进花梗茎段分化芽，高浓度促进分化原球茎。培养基1／2MS 6-BAlmg／L NAA0．2mg／L 10％椰子水 0．1％活性碳适合原球茎增殖。椰子水和香蕉汁能促进原球茎和芽的增殖，兼具防褐变和壮苗功能，椰子水效果优于香蕉汁。原球茎分化培养基宜用1／2MS 6．BA0．2mg／L 10％椰了水 0．1％活性碳。适宜生根培养基为1／2MS 1BA0．5rag／L 10％椰了水 0．1％活性碳。水苔是良好的移栽基质，成活率达81．3％。 相似文献
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甜叶菊茎尖组培苗生根及移栽的研究 总被引：1，自引：0，他引：1
采用甜叶菊的幼嫩茎尖为外植体,MS为基本培养基。在添加6-BA1．0mg／L＋蔗糖30g／L＋琼脂6g／L的诱导培养基上．进行丛生芽的诱导培养。如果不感染病菌,诱导出芽率可达100％。继代增殖培养基采用MS＋6-BA0．5mg／L＋NAA0．05mg／L＋蔗糖30g／L＋琼脂6g／L,继代培养30d后,丛生芽数可增殖14--15倍。在1／4MS＋IBA0．1mg／L＋NAA0．1mg／L＋蔗糖30g／L＋琼脂6g／L＋性炭1g／L的生根培养基上诱导生根,效果最好,生根率达100％．组培苗出瓶前先敞口炼苗2d．生根苗移栽后成活率可达95％以上。 相似文献
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以蝴蝶兰新品种‘8411’花梗为外植体,研究了各种因素对其离体培养各阶段的影响。结果表明：蝴蝶兰花梗芽的无菌消毒以0.1% HgCl2处理15 min较好,污染率和萌芽率分别为24.0%和72.0%;蝴蝶兰不定芽最适继代增殖培养基为1/2MS＋6-BA5.0mg/L＋AD5mg/L＋NAA0.1mg/L＋CH1.0g/L＋糖30g/L,增殖系数达2.43;香蕉泥、土豆泥、椰汁的添加均有利于蝴蝶兰的壮苗生根,叶片大小及平均根数与对照组相比均有显著增加,叶片大小均达2.58 cm以上,平均根数均达2.65条以上,生根率均达100%。 相似文献
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大花蕙兰无菌试管苗的茎尖腋芽在1／2MS＋6-BA0．2mg／l＋0．1％AC培养基上原球茎的诱导率达50％。MS、1／2MS、KC和VW四种培养基对原球茎增殖影响没有明显差异，增殖倍率在3、51～3．89之间，但影响原球茎的发芽率和生根率。原球茎增殖培养基中加入0.5mg／l NAA有利于原球茎增殖倍数与生根率的提高。四种不同细胞分裂素处理中，以1mg／L BA最有利于原球茎增殖倍数的提高。试管苗较为理想的移栽基质是水苔，成活率可达86．7％。 相似文献
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《热带作物学报》2017,(9)
以羽裂报春苣苔的叶片为外植体,通过研究不同灭菌方法、不同植物生长调节剂种类和浓度对组织培养的影响,建立了羽裂报春苣苔的组织培养体系。结果表明:羽裂报春苣苔适宜的外植体灭菌方法为采用75%酒精灭菌20 s,无菌水冲洗3次;然后用0.1%升汞灭菌6 min,无菌水冲洗3次;再用0.1%升汞灭菌6 min,无菌水冲洗3次,成活率为55.40%。不定芽的诱导培养基为MS+6-BA 1.0~2.0 mg/L+NAA 0.01~0.10 mg/L,诱导率达100.00%。在适宜的增殖培养基MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.05 mg/L+活性炭0.1 g/L上,增殖系数高达8.61;在生根培养基MS+IBA 0.5 mg/L+活性炭0.1 g/L上,生根率达100.00%,生根时间为19.10 d。移栽基质为泥炭∶珍珠岩∶河沙=4∶1∶1(V∶V∶V),移栽成活率为99.60%。 相似文献
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以‘热研2号’柱花草茎段为外植体,研究不同激素种类及组合对试管苗诱导、增殖和生根的影响。结果表明：将带芽茎段接种在MS＋6-BA 5.0 mg/L＋GA3 0.5 mg/L的培养基中腋芽诱导率最高可达90%;最佳不定芽增殖培养基为MS＋6-BA 1.0 mg/L＋NAA 0.5 mg/L,其分化率达100%;最佳生根培养基为MS＋IBA 1.0 mg/L＋IAA 1.0 mg/L。综上所述,该研究结果改变了丛生芽的产生途径,缩短了分化时间,提高了增殖速度,是快速繁殖柱花草苗的有效方法。 相似文献
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以黑美人粗肋草带腋芽的茎段为外植体,研究不同灭菌方法、不同接种方法以及在培养基中添加不同浓度的植物生长调节剂对黑美人粗肋草离体快繁的影响.结果表明:(1)采用75％酒精擦拭外植体和0.1％ HgCl2灭菌处理20min较适合黑美人粗肋草的离体快繁;(2)采用芽眼朝上水平放置的接种方式较适合不定芽的诱导;(3)不定芽诱导最佳培养基为MS+2.0mg/L 6-BA+0.1mg/L NAA,不定芽诱导率达94.10％;(4)通过继代增殖培养筛选出较适合的培养基为MS+4.0mg/L 6-BA+0.05mg/L NAA,增殖倍数为6.30倍,最适继代代数为5～6代;(5)幼苗转入1/2MS+0.2～0.3mg/L NAA的培养基中生根效果较好,生根率达到100％;(6)移栽至泥炭或者菜园土的基质中并保温保湿,成活率较高,分别达到92.30％和88.00％. 相似文献
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以当年巨桉实生苗顶芽、幼嫩侧芽为繁殖材料,以培养基MS＋6-BA 0.25 mg/L＋IBA 0.3mg/L＋蔗糖35g/L＋卡拉胶6.2 g/L,诱导获得丛芽,在培养基MS＋6-BA 0.25 mg/L＋IBA 0.3 mg/L＋NH4NO3 3 mg/L＋蔗糖35 g/L＋卡拉胶6.2 g/L上继代增殖,增殖倍数2.5以上,生根诱导在MS＋NAA 0.25 mg/L＋IBA 0.3 mg/L＋蔗糖25 g/L＋卡拉胶5.2 g/L的培养基上获得健壮的生根苗,生根诱导率90%以上,移栽苗圃获得成功。 相似文献
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蝴蝶兰花梗的组织培养及快速繁殖 总被引：12，自引：1，他引：12
以蝴蝶兰的花梗为外植体，在1／2MS＋6－BA3mg/L NAA0.2mg/L的培养基上诱导花梗苗；以去茎法的茎段为增殖材料，增殖培养基为花宝1号2g/L,6-BA5-10mg/L,NAA0.2mg/L，腺嘌呤0mg/L,肌醇100mg/L，椰子汁10％（V／V），可取得较高的增殖率，增殖芽在生根培养基中，花宝1号3．5g/L,NAA2mg/L,IBA1mg/L，水解乳蛋白1g/L，香蕉泥105，活性炭1g/L，生根效果好。 相似文献
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采用改良DNS等方法筛选出的生长快、糖苷含量高的甜叶菊品系1096为材料,研究了不同外植体、不同激素种类和配比对愈伤组织诱导、不定芽分化和生根的影响。结果表明:以茎尖为外植体愈伤组织和不定芽诱导率均最高;其次是带腋芽茎段;再次为叶片。无腋芽茎段和无菌根均能诱导出愈伤组织,但不能诱导成芽。茎尖不定芽诱导的最佳培养基为MS+6-BA 1.0mg/L;叶片不定芽诱导的最佳培养基为MS+6-BA 1.0mg/L+IAA 1.0mg/L;带腋芽茎段不定芽诱导的最佳培养基为MS+6-BA 1.5mg/L。不定芽继代增殖培养采用MS+6-BA 0.5mg/L+NAA0.05mg/L;在1/4MS+IBA 0.1mg/L+NAA 0.1mg/L+1g/L活性炭的培养基上诱导生根,生根率可达100%,生根苗移栽后成活率达95%。 相似文献
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海南龙血树的组织培养与快速繁殖 总被引：14，自引：0，他引：14
以海南龙血树的顶芽和侧芽作为外植体,把其接种于MS＋BA1mg/L＋NAA0．1mgg/L＋PVP100 mg/L＋蔗糖30g／L培养基上培养40-50d可诱导其腋芽萌发,再把萌发后所形成的新芽切割下来接种于MS＋BA 2mg／L＋KT 0．5mg／L＋蔗糖30g／L的培养基上培养25-30d可诱导形成丛生芽,丛生芽在继代培养过程中每25-30d可增殖3～5倍。把丛生芽分割成单株并接种于MS＋BA3mg厂L＋GA,1mg／L＋蔗糖30g／L培养基上培养4周后使其壮苗后再接种于MS＋NAA0．5～1．0mg／L＋蔗糖30g／L培养基上培养4周可诱导小芽形成完整的根系,小植株移栽成活率可达98％。该体系的建立为海南龙血树的工厂化育苗奠定了坚实的基础。 相似文献
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为了奠定频繁开花型高产小桐子的快繁及转基因基础,通过对小桐子茎段腋芽培养、叶片和叶柄愈伤诱导及不定芽分化的不同激素组合培养进行研究。结果表明：适合该高产品种的茎段培养的最佳培养基为MS＋6-BA 0.5 mg/L＋IBA 0.1 mg/L,叶片愈伤诱导及不定芽分化培养基为MS＋6-BA 2.5 mg/L＋IBA 0.5 mg/L,叶柄愈伤诱导及不定芽分化培养基为MS＋6-BA 1.0 mg/L＋IBA 0.2 mg/L,生根培养以1/2MS＋IBA 0.5 mg/L＋AC 0.1%较为适宜。引起小桐子组培苗玻璃化现象的主要原因之一是BA浓度过高;在不定芽的分化培养中,愈伤过多会严重影响不定芽的数量及质量。 相似文献