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以红掌新品种阿拉巴马的幼叶为外植体,进行植株再生研究,以建立红掌叶片愈伤组织诱导和高效组织培养快繁体系。结果表明:1/2 MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L红掌诱导愈伤组织的效果最佳,愈伤组织诱导率达50.0%;N6+6-BA 2 mg/L+2,4-D 0.5 mg/L,产生丛生芽的效果最好,愈伤分化率高达90%;适合诱导生根的培养基为1/2 MS+NAA 0.5 mg/L。 相似文献
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[目的]不断优化红掌组培高效再生体系.[方法]以4个红掌盆栽品种的叶柄、叶片为外植体,研究红掌初代培养诱导愈伤组织的品种差异性.[结果]品种SAM、SST的愈伤组织形成能力强于SDM、SHG,其中品种SAM、SDM、SHG的叶片再生能力强于叶柄,而品种SST的叶柄再生能力较强.品种SST叶柄愈伤组织诱导的适宜培养基为1/2 MS+TDZ 4.0 mg/L+2,4-D 0.2 mg/L,出愈率可达87.5%;品种SAM叶片愈伤组织诱导的适宜培养基为1/2 MS+TDZ 2.0 mg/L+2,4-D 0.2 mg/L,出愈率高达90%;品种SDM、SHG叶片愈伤组织诱导适宜的培养基为1/2 MS+ZT 2.0 mg/L+2,4-D 0.2mg/L,出愈率分别可达59.34%和79.63%.[结论]在构建及优化红掌组培快繁技术体系时,除了品种因素以外,还需考虑不同外植体类型的分化能力差异. 相似文献
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《农业科学与技术》2016,(4)
[目的]不断优化红掌组培高效再生体系。[方法]以4个红掌盆栽品种的叶柄、叶片为外植体,研究红掌初代培养诱导愈伤组织的品种差异性。[结果]品种SAM、SST的愈伤组织形成能力强于SDM、SHG,其中品种SAM、SDM、SHG的叶片再生能力强于叶柄,而品种SST的叶柄再生能力较强。品种SST叶柄愈伤组织诱导的适宜培养基为1/2 MS+TDZ 4.0 mg/L+2,4-D 0.2 mg/L,出愈率可达87.5%;品种SAM叶片愈伤组织诱导的适宜培养基为1/2 MS+TDZ 2.0 mg/L+2,4-D 0.2 mg/L,出愈率高达90%;品种SDM、SHG叶片愈伤组织诱导适宜的培养基为1/2 MS+ZT 2.0 mg/L+2,4-D 0.2mg/L,出愈率分别可达59.34%和79.63%。[结论]在构建及优化红掌组培快繁技术体系时,除了品种因素以外,还需考虑不同外植体类型的分化能力差异。 相似文献
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[目的]研究红掌工厂化育苗的关键技术。[方法]以红掌盆花和切花品种的叶片、叶柄、花苞片和花苞柱头为外植体,进行组培快速繁殖技术研究,探讨外植体的选择和消毒条件以及不同培养基对红掌愈伤组织的诱导、增殖和生根影响。[结果]叶柄为最佳外植体,愈伤诱导率最高,达78.3%;外植体采用0.1%HgCl2消毒8min的效果最好;粉冠军和MIDORI的最佳愈伤组织诱导培养基为1/2MS+6-BA1.50mg/L+KT1.00mg/L+2,4-D0.10mg/L;最佳愈伤组织继代培养基为MS+6-BA0.50mg/L+KT0.50mg/L+NAA0.10mg/L,添加10%的椰子汁或香蕉浆有利于增殖和丛芽生长,增殖率最高达2.83倍;最佳生根培养基为1/2MS+NAA0.10mg/L+IAA0.10mg/L,生根率达100%。[结论]该结果为红掌工厂化育苗体系的建立奠定了基础,对确保红掌产业的发展具有重要意义。 相似文献
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摘要:以中苎一号叶片为外植体,研究了外植体消毒时间、培养基、生长调节物质对苎麻品种中苎一号叶片愈伤诱导、分化不定芽和生根的影响。其结果表明:先用75%酒精消毒10秒,再用0.1%升汞灭菌8分钟,同时滴入1-2滴1% HCL效果最好。中苎一号最佳叶片愈伤组织诱导基本培养基为1/2MS;最佳叶片愈伤组织诱导培养基组合为:1/2MS+0.05mg/L TDZ+0.01mg/L IAA+0.03mg/L 2,4-D;最佳愈伤分化培养基为: 1/2MS+0.5mg/L TDZ+0.02mg/L 2,4-D+0.03mg/L IAA;最佳生根培养基为:1/2MS+0.02mg/L TDZ+O.O5mg/L NAA+0.02mg/L IAA, 形成了较为完善的组织培养再生体系,再生率达到了26%以上 相似文献
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[目的]建立红掌的组织培养再生体系。[方法]以红掌幼嫩叶柄为材料,筛选红掌愈伤组织诱导、不定芽分化、生根时的最佳激素配比。[结果]红掌叶柄愈伤组织诱导的最佳培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L 2,4-D,此时愈伤组织诱导率可达80.0%;不定芽分化的最佳培养基为MS+1.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L 2,4-D+1.5 mg/L KT,此时分化率可达96.7%;生根的最佳培养基为MS+1.0mg/L IBA,此时生根率可达86.7%。[结论]为红掌的快速繁殖提供了技术依据。 相似文献
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红掌的叶片培养及快速繁殖技术研究 总被引:3,自引:0,他引:3
以红掌叶片为外植体,利用4种不同的愈伤组织培养基,4种不同的生根培养基和5种移栽基质进行组织培养的对比试验,结果表明:最佳愈伤组织诱导培养基、生根培养基及移栽基质分别为:1/2MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.5mg/L、1/2MS+IBA 0.1mg/L和珍珠岩+泥炭土(1∶1)。 相似文献
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研究了2种外植体(叶片、茎段)、消毒方法、培养基种类、活性炭、植物生长调节剂等因素对头花蓼愈伤组织诱导及分化的影响。结果表明,最佳消毒方法为以0.15%HgCl2消毒叶片6min和10%NaClO消毒茎段9min;不同培养基诱导愈伤组织发生率依次为MS1/2MSB5;MS+6-BA 1.0mg/L+NAA 0.3mg/L有利于愈伤组织形成;MS+6-BA 4mg/L+NAA 0.2mg/L有利于愈伤组织增殖;MS+6-BA 8mg/L+IBA 0.1mg/L有利分化,分化率为83.33%,产生不定芽平均数为5.1个。培养基中附加100mg/L活性炭,褐化率仅为6.80%,愈伤组织生长和分化效果较好。 相似文献
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红掌叶不同部位愈伤组织的诱导及植株再生 总被引:7,自引:0,他引:7
本文采用红掌叶的叶柄、叶柄与叶片连接处、带主脉叶片及不带主脉叶片作为外植体,对红掌叶不同部位愈伤组织的诱导及植株再生进行了深入研究,结果表明,红掌叶愈伤组织的诱导及分化能力与叶的不同部位有关,叶柄与叶片连接处的诱导效果最好,改良MS(MS中KNO3、NH4NO3、KH2PO4分别改为950 mg/L、825 mg/L、340 mg/L)作基本培养基优于1/2MS和MS,其愈伤组织诱导及分化的最佳培养基为改良MS+6-BA 1.5 mg/L+2,4-D 0.5 mg/L(单位下同);最佳增殖培养基为改良MS或1/2MS+6-BA1.0+KT0.1+NAA0.2;最佳生根培养基为1/2改良MS+IBA0.3+NAA0.2。 相似文献
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红掌工厂化育苗关键技术研究 总被引:4,自引:0,他引:4
[目的]研究红掌工厂化育苗的关键技术。[方法]以红掌盆花和切花品种的叶片、叶柄、花苞片和花苞柱头为外植体,进行组培养快速繁殖技术研究,探讨外植体的选择和消毒条件以及不同培养基对红掌愈伤组织的诱导、增殖和生根影响。[结果]叶柄为最佳外植体,愈伤诱导率最高,达78.3%;外植体采用0.1%HgCl2消毒8 min的效果最好;粉冠军和MIDORI的最佳愈伤组织诱导培养基分别为1/2MS+6-BA1.50 mg/L+2,4-D0.50 mg/L+NAA0.10 mg/L和1/2 MS+6-BA1.50 mg/L+KT1.00 mg/L+2,4-D0.10 mg/L;最佳愈伤组织继代培养基分别为MS+6-BA1.00 mg/L+NAA0.50 mg/L+2,4-D0.30 mg/L和MS+6-BA0.50 mg/L+KT0.50 mg/L+NAA0.10 mg/L,添加10%的椰子汁或香蕉浆有利于增殖和丛芽生长,增殖率最高达2.83倍;最佳生根培养基为1/2 MS+NAA0.10 mg/L+IAA0.10 mg/L,生根率达100%。[结论]该结果为红掌工厂化育苗体系的建立奠定了基础,对确保红掌产业的发展具有重要意义。 相似文献
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红掌组培快繁技术优化研究 总被引:2,自引:0,他引:2
[目的]对红掌组培快繁技术体系进行优化。[方法]以红掌红粉佳人品种为材料,通过设置不同的基本培养基和激素配比,研究红掌的不定芽诱导、增殖和生根等情况,以筛选出最佳的培养配方和方法。[结果]最佳愈伤组织诱导和不定芽分化培养基为MS+6-BA1.0 mg/L+2,4-D 0.1 mg/L+NAA 0.1 mg/L,其愈伤组织诱导率为73.3%,不定芽分化率为90.9%;在增殖培养基MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L上诱导出的芽数量与大小最适宜;生根培养以1/2MS+NAA 0.2 mg/L+活性炭1.0 g/L培养基表现最好;移栽基质以珍珠岩+草炭土(1∶1)混合栽培基质成活率最高,达95.6%。[结论]为红掌种苗的工厂化生产提供了参考。 相似文献
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《现代农业科技》2019,(17)
用红胜利红掌作为试验材料,研究了不同的培养基对红胜利红掌愈伤组织诱导、不定芽的分化与增殖及壮苗的影响。结果表明,叶柄是合适的愈伤组织诱导外植体,适宜红胜利红掌愈伤组织诱导培养基为1/2MS(MS的大量元素减半)+6-BA 1 mg/L+2,4-D 0.2 mg/L,诱导率达到77.8%;分化培养基为1/2MS+6-BA 1.5 mg/L+NAA 0.2 mg/L+水解酪蛋白0.5 g/L,分化率达到100%;增殖培养基为1/2MS+KT2 mg/L+NAA 0.2 mg/L,增殖系数达到4.27±0.35;壮苗培养基为1/2MS+椰汁10%,壮苗后接入1/2MS+NAA 0.2 mg/L培养基进行生根培养。 相似文献