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相似文献
 共查询到20条相似文献,搜索用时 171 毫秒
1.
香茅草组织培养快速繁殖技术   总被引:5,自引:0,他引:5  
以香茅草茎尖为外植体进行培养,结果表明,在MS+6-BA4.0mg/L+NAA0.1mg/L的培养基上培养1周后,诱导出腋芽;MS+6-BA3.0mg/L+NAA0.1mg/L培养基对丛生芽的增殖效果最好;生根培养基选用1/2MS+IBA1.0mg/L+NAA1.0mg/L附加活性炭0.05%为最佳,生根率达100%。  相似文献   

2.
黄梁木组培快繁技术研究   总被引:1,自引:1,他引:0  
对黄梁木组培快繁及规模化育苗技术进行了研究,结果表明:最适诱导培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA0.1 mg/L+GA3 2.0 mg/L;最佳增殖培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.05 mg/L,增殖系数达3.4以上;适宜的生根培养基为MS+NAA 0.1 mg/L,15 d内生根率100%以上,平均根数为7.8条,平均根长为1.42 cm.  相似文献   

3.
细叶百合鳞片诱导与遗传转化组培体系的建立   总被引:1,自引:0,他引:1  
为扩大细叶百合(Lilium pumilun)在生物技术领域的应用,本研究以细叶百合鳞片为外植体,MS培养基为基础培养基,附加不同种类和浓度的植物生长调节物质(6-BA,NAA,IAA,IBA)诱导丛生芽及再生植株,对体系中外植体消毒时间及各阶段培养基的激素配比进行了研究.结果表明:0.1%氯化汞溶液最佳灭菌时间为8 min;最佳诱导培养基为MS+ 6-BA 0.5 mg/L+ NAA 0.1 mg/L;最佳继代培养基为MS+ 6-BA 1.0 mg/L+ NAA 0.1 mg/L;最佳增殖培养基为MS +6-BA 0.1 mg/L+ NAA 0.5 mg/L;最佳生根培养基为1/2 MS+ IAA0.1 mg/L+ IBA 0.1 mg/L.  相似文献   

4.
艳凤梨组培快繁技术研究   总被引:2,自引:1,他引:2  
以艳凤梨侧芽的茎尖和茎段为材料,MS+6-BA2.0mg/L+NAA0.05mg/L为诱导培养基,MS+6-BA3.0mg/L+NAA0.1mg/L为增殖培养基,1/2MS+NAA1.0mg/L+IBA1.0mg/L+AC 3.0mg/L为生根培养基,移栽后试管苗成活率达90%~95%。  相似文献   

5.
三苞唇柱苣苔离体培养体系的建立   总被引:1,自引:0,他引:1  
以三苞唇柱苣苔(Chirita tribracteata W.T.Wang)的幼嫩叶片为外植体,开展外植体消毒灭菌、叶片愈伤组织的诱导及分化、继代增殖培养、生根培养以及植株玻璃化的研究。结果表明:叶片的灭菌方法可采用乙醇浸泡10 s结合升汞浸泡12~16 s;叶片的最佳愈伤组织诱导、分化培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L;继代增殖培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+IBA 0.1~0.5 mg/L或者MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1~0.5 mg/L;最佳生根培养基为1/2 MS+IBA 0.1~0.3 mg/L,生根率为100.00%;培养基中不添加6-BA或添加低浓度的6-BA或者添加适量活性炭均可减轻植株的玻璃化。  相似文献   

6.
黄登艳  陈泽雄 《湖北农业科学》2014,(5):1182-1184,1188
以黄精(Polygonatum sibiricum Delar.ex Redoute)根茎为试材,研究不同培养基组合对黄精根茎离体再生的影响。结果表明,黄精根茎最佳诱导培养基为MS+4.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA,最佳增殖培养基为MS+2.0 mg/L 6-BA+1.0 mg/L TDZ+0.1 mg/L IBA,最佳生根培养基为1/2 MS+0.5 mg/L NAA+0.5 mg/L IBA+50 mg/L AC。  相似文献   

7.
以海沃德猕猴桃带芽茎段为外植体直接诱导再生芽,对继代增殖和生根等培养基进行筛选试验,建立海沃德猕猴桃组织培养快繁技术。结果表明:75%乙醇30 s+0.1%氯化汞8 min为最佳消毒方法;诱导再生芽培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA;继代增殖培养基为MS+2.0 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA,其增殖系数为3.60;生根培养基为1/2MS+0.7 mg/L IBA,生根率达100%,平均生根数达7.8条。  相似文献   

8.
以金边碧玉的叶片为外植体,对其组织培养与快繁技术进行了初步研究.试验结果表明,适宜叶片直接诱导丛生芽的培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L,诱导出的丛生芽粗壮嫩绿,继代培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.1 mg/L和MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.2 mg/L,叶片愈伤组织诱导培养基为MS+6-BA3.0mg/L+NAA 0.5 mg/L,最佳生根培养基为1/2MS+IBA 0.8 mg/L和1/2MS+IBA 1.0 mg/L.  相似文献   

9.
【目的】探讨常温下适宜箭杆杨试管苗腋芽增殖、生根的最佳培养条件。【方法】以MS培养为基本培养基,附加不同浓度的吲哚丁酸(IBA)、萘乙酸(NAA)以及6-氨苄基腺嘌呤(6-BA)组成试验培养基,对箭杆杨组织进行培养,观察其生根情况和愈伤组织诱导情况。【结果】箭杆杨脱分化最佳培养基为:MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1mg/L IBA,该条件下的愈伤组织诱导率为90%;不定芽分化诱导培养基为:1/2MS+0.1 mg/L IBA+0.5 mg/L6-BA,该条件下的诱导分化率为67.1%;芽增殖培养基为:MS+1.0 mg/L 6-BA+0.1mg/L IBA,该条件下的增殖数为5.8;最佳生根培养基为:1/2MS+1.0 mg/L IBA,该条件下的生根率为81.3%。【结论】建立了箭杆杨组织培养再生体系,为其种质资源的试管保存奠定了基础。  相似文献   

10.
为野生泸定百合资源的保护及开发应用提供依据,以其鳞片为外植体,观察其不定芽的诱导、增殖以及生根培养情况。结果表明:野生泸定百合鳞片用0.1%升汞消毒15 min,效果较好;MS+6-BA1.0mg/L+NAA0.1mg/L为野生泸定百合鳞片最佳不定芽诱导培养基,平均每鳞片分化芽数达5.4个;MS+6-BA 2.0mg/L+NAA 0.05mg/L为鳞片最佳增殖培养基,增殖系数达7.66;1/2MS+IBA 1.0mg/L为鳞片最佳生根培养基,生根率达95.2%,平均根数5.3条,平均根长3.9cm。  相似文献   

11.
以澄迈桥头地瓜顶芽茎尖生长点为外植体,对桥头地瓜脱毒苗技术进行研究,探讨不同激素浓度对桥头地瓜生长点诱导及壮苗生根的影响,获得一套澄迈桥头地瓜脱毒苗繁殖方法。结果表明:桥头地瓜顶芽茎尖生长点诱导不定芽的最适培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+IBA 0.1 mg/L;继代培养基为MS+6-BA 2.0 mg/L+IBA 0.5 mg/L;最佳壮苗生根诱导培养基为1/2 MS+NAA 0.1 mg/L。  相似文献   

12.
香叶天竺葵组培快繁体系的研究   总被引:2,自引:0,他引:2  
以香叶天竺葵无菌苗叶片为外植体,MS为基本培养基进行组培快繁研究,结果表明:愈伤组织诱导最佳培养基为MS+6-BA 0.2 mg/L+2,4-D 0.1 mg/L;不定芽诱导最佳培养基为MS+6-BA 0.2 mg/L+NAA 0.5 mg/L;不定芽增殖最佳培养基为MS+6-BA 1.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L;最佳生根培养基为MS+NAA 0.1 mg/L,生根率达100%,且根系长势良好.  相似文献   

13.
娇小白掌的组培快繁研究   总被引:1,自引:1,他引:0  
取白掌的侧芽苗外植体为材料,在不同激素成分及浓度水平下进行组织培养。结果表明,适宜的诱导培养基为MS+6-BA 3.0mg/L+NAA 0.3 mg/L,诱导率100%;继代增殖培养基为MS+6-BA 4.0 mg/L+NAA 0.5 mg/L,增殖系数达3.90;最佳生根培养基为1/2 MS+NAA 0.1 mg/L+IBA 0.1 mg/L,生根率100%。  相似文献   

14.
以日本独头白菊‘精诚’植株的顶芽、带腋芽茎段为外植体进行离体快繁研究。结果表明:以0.1%Hg Cl2为表面消毒剂,最适消毒时间为5 min,初代培养中,顶芽的培养效果比带腋芽茎段更好;以顶芽为外植体,初代培养的最适培养基为MS+0.5 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA,其平均有效芽诱导数为5.87;在增殖培养中,以带腋芽茎段诱导丛生芽,其最适增殖培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA+0.3 mg/L NAA,增殖系数为6.92;以叶片切段诱导不定芽,其最适增殖培养基为:MS+1.0 mg/L 6-BA+0.3 mg/L NAA,增殖系数为3.59;以叶柄诱导不定芽,其最适增殖培养基为:MS+1.5 mg/L 6-BA+0.15 mg/L NAA,增殖系数为0.49;最适生根培养基为:1/2MS+0.35 mg/L IBA,生根率100%。本研究结果可以为日本独头白菊‘精诚’的工厂化生产提供技术支持,具有重要的实践价值。  相似文献   

15.
以荷花顶芽为外植体进行组织培养取材、消毒、诱导与增殖的研究.结果显示,荷花组织培养最佳外植体为1未展叶带1芽;外植体氯化汞消毒最佳时间为20 min;最佳诱导培养基为MS+ NAA 0.1 mg/L+6-BA 1.0 mg/L;最佳增殖培养基为MS+ NAA 0.05 mg/L+6-BA 2.0 mg/L,均为固体培养.  相似文献   

16.
刘静 《南方农业学报》2011,42(8):839-842
优化兰州百合组织培养体系,提高其植株再生率,建立高频植株再生体系.采用正交试验设计,以鳞片为外植体,以MS和1/2MS培养基为基本培养基,附加不同浓度NAA(0.2~1.0 mg/L)、6-BA(0.5~2.0 mg/L)、KT(0.1~1.0 mg/L)、IBA(0.2~1.0 mg/L)、IAA(0.2~1.0 mg/L),对兰州百合进行鳞茎诱导、增殖和生根培养,筛选最佳激素配比.6-BA浓度过低或过高均不利于小鳞茎形成,当1.0 mg/L 6-BA与0.2~1.0 mg/L NAA配比时,鳞茎诱导率和平均生成鳞茎数较高;随着NAA浓度增加,平均生成鳞茎数不断增加,其中以1.0 mg/L 6-BA+1.0 mg/L NAA组合平均小鳞茎最多,为5.9个.与0.5~1.0 mg/L KT+0.2 NAA mg/I组合相比,添加0.5~1.5 mg/L6-BA+0.5~1.0 mg/L KT或0.2NAA mg/L组合培养基更利于芽增殖,但其丛芽长势较弱,其中以添加0.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA培养基从芽长势和小鳞茎长势较好,平均分化鳞茎较多.在以MS、1/2MS为基本培养基、分别添加0.2~1.0 mg/LIAA或IBA培养基中,随着IAA或IBA浓度升高,鳞茎生根率不断降低,根质量不断下降,而平均根数和根长表现有所不同.从根质量来看,MS培养基根质量不如1/2MS培养基;而在1/2MS培养基中,1/2MS与IBA组合优于与IAA组合.鳞茎诱导最佳培养基为MS+1.0 mg/L 6-BA+NAA 0.5~1.0 mg/L,不定芽增殖最适培养基为MS+0.5 mg/L 6-BA+0.2mg/L NAA,最佳生根培养基为1/2MS+0.2 mg/L IBA,生根效最好,生根率为100.0%,根中等长度、粗壮,质量最好.  相似文献   

17.
以裸花紫珠无菌苗幼嫩茎段为外植体,研究不同激素配比下芽诱导、增殖和生根情况,获得一套裸花紫珠快速繁殖的方法。结果表明:裸花紫珠幼嫩茎段诱导不定芽的最适培养基为MS+ 6-BA 2.0 mg/L+ NAA 0.1~0.3 mg/L;不定芽在添加6-BA和NAA的各处理上均可增殖,在MS+ 6-BA 1.0 mg/L+ NAA 0.3 mg/L上增殖系数最高、芽苗健壮;最佳生根诱导培养基为1/2MS+ NAA 0.05 mg/L+ IBA 0.5 mg/L。此方法可为裸花紫珠快繁提供技术支持。  相似文献   

18.
以金叶苔草茎尖为外植体,进行不定芽诱导、增殖、壮苗、生根和移栽技术研究.结果表明:不定芽诱导和最佳增殖培养基为MS+ 6-BA 0.5 mg/L+ NAA0.05 mg/L;最佳壮苗培养基为MS+ 6-BA 0.05 mg/L+NAA 0.01 mg/L;最佳生根培养基为1/2 MS+ NAA 0.1 mg/L+ IBA 0.1 mg/L,生根试管苗移人泥炭∶珍珠岩=2∶1的混合基质中,移栽成活率可达95%以上.增殖培养过程中选择光照时间8 h/d、光照强度1 500 lx,生根培养选用大容器育苗,可以提高生产效率降低生产成本.  相似文献   

19.
《山西农业科学》2016,(12):1776-1779
以耧斗菜幼嫩叶片及叶柄为外植体,研究了不同生长调节物质对外植体愈伤组织诱导、不定芽分化和生根的影响。结果表明,在培养基MS+2,4-D 1.0 mg/L+6-BA 0.5 mg/L上诱导叶柄产生愈伤效果最好,诱导率为80.5%;在培养基MS+NAA 0.5 mg/L+6-BA 1.0 mg/L上叶片愈伤诱导效果最好,诱导率为92.7%。继代培养基为MS+2,4-D 0.5 mg/L+6-BA 0.5 mg/L和MS+NAA 0.5 mg/L+6-BA 2.0 mg/L。在培养基MS+NAA 0.5 mg/L+6-BA 0.5 mg/L中分化芽;分化的芽在MS+NAA 0.1 mg/L+6-BA 0.5 mg/L中增殖。生根培养基为1/2 MS+NAA0.1 mg/L或1/2 MS+IBA 0.2 mg/L。  相似文献   

20.
以红掌品种"粉冠军"幼嫩叶片为外植体,进行组培快繁技术优化研究。结果表明,红掌品种"粉冠军"叶片愈伤组织最佳诱导培养基为MS+1 mg/L 6-BA+0.1 mg/L 2,4-D,其愈伤组织诱导率可达到76.7%;最佳不定芽分化培养基为MS+1 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA,;最佳的继代增殖培养基为MS+0.5 mg/L 6-BA+0.05 mg/L NAA,;最佳生根培养基为1/2MS+0.05 mg/L IBA。  相似文献   

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