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相似文献
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1.
本试验采用单因素试验设计,通过在基础饲料中添加0(对照)、0.025%、0.050%、0.100%、0.200%和0.400%的纤维素酶,配制6种试验饲料,饲喂平均初始体重为(1.44±0.01)g的幼刺参49 d,以研究饲料中添加纤维素酶对幼刺参生长性能、消化能力和非特异性免疫力的影响.每组设3个重复,每个重复35头刺参.结果表明:饲料中添加0.025%~0.100%纤维素酶可显著提高幼刺参的特定生长率(SGR) (P<0.05),降低饲料系数(FCR) (P<0.05),其中0.100%组的SGR最高和FCR最低.饲料中添加纤维素酶对幼刺参的摄食率(FI)和成活率(SR)无显著影响(P>0.05).饲料干物质表观消化率(ADCd)和粗蛋白质表观消化率(ADCp)随着纤维素酶添加量的增加先上升后下降,其中0.100%组的ADCd和ADCp最高,显著高于对照组(P<0.05),0.400%组的ADCd与对照组差异不显著(P>0.05),但ADCp显著低于对照组(P<0.05).饲料中添加纤维素酶后幼刺参前肠、中肠和后肠淀粉酶(AMS)活性均有所升高,其中0.100%、0.200%和0.400%的纤维素酶分别对前肠、中肠和后肠AMS活性作用显著(P<0.05).饲料中添加0.100% ~0.200%纤维素酶可显著提高幼刺参肠道中超氧化物歧化酶(SOD)和酸性磷酸酶(ACP)活性(P<0.05).由此得出,在本试验条件下,饲料中添加纤维素酶可促进幼刺参生长,提高其消化能力和非特异性免疫力.综合考虑生长、消化和非特异性免疫指标,在幼刺参饲料中纤维素酶的适宜添加量为0.100%.  相似文献   

2.
在水温14.8~18.6℃、盐度(29±1)PSU下,用120 L的蓝色塑钢水箱研究了饲料中添加低聚木糖(xylo-oligosaccharides,XOS)对仿刺参(Apostichopus japonicus Selenka)幼参生长性能、肠道消化酶活力和免疫力的影响。配制XOS添加量分别为0(对照)、0.015%、0.030%、0.045%、0.060%和0.075%的6组试验饲料,投喂平均体重为(6.80±1.05)g的仿刺参幼参75 d。每组饲料随机投喂3个水箱,每个水箱放养45头幼参。结果显示:饲料中添加XOS显著提高了仿刺参幼参的特定生长率(SGR)(P0.05)。饲料中XOS添加水平(X)与仿刺参幼参SGR(Y)之间的回归方程为Y=-151.68 X2+13.302 X+0.860 7(R2=0.927 5),得出XOS添加量为0.044%时SGR最高。饲料中添加XOS对仿刺参幼参的成活率(SR)和出皮率(GBW R)无显著影响(P0.05)。饲料中添加XOS提高了仿刺参幼参的干物质表观消化率(ADDM),但仅0.030%组显著高于对照组(P0.05)。饲料中添加0.030%~0.060%的XOS显著提高了仿刺参肠道蛋白酶、淀粉酶活力和体腔液中超氧化物歧化酶(SOD)活力(P0.05),以0.045%组肠道蛋白酶和淀粉酶活力最高,以0.060%组体腔液中SOD活力最大。饲喂30 d时,饲料中添加0.030%~0.075%的XOS显著提高了仿刺参体腔液中碱性磷酸酶(AKP)活力(P0.05),而饲喂60 d时,除0.045%组外,其他各组体腔液中AKP活力无显著差异(P0.05)。由此得出,饲料中添加0.030%~0.060%的XOS可提高仿刺参幼参肠道消化酶活力,增强其免疫力,从而促进仿刺参幼参生长;仿刺参饲料中XOS的最适添加量为0.044%,建议XOS投喂时间在2个月左右。  相似文献   

3.
将复合酶制剂按照0、100、200、800 mg/kg的比例分别添加到刺参基础饲料中,制成等能(38.34 kJ/kg)等氮(13.25%±0.5%粗蛋白质)饲料A、B、C、D,分别投喂体重为(0.65±0.02)g的刺参,饲养60 d,研究其对刺参生长、免疫及肠道消化酶活性的影响。结果显示:与对照组相比,饲料中添加复合酶制剂后D组刺参的特定生长率提高了11.52%(P0.05),其余各组间饲料效率差异不显著(P0.05)。饲料中添加复合酶显著提高了刺参体腔液的超氧化物歧化酶(SOD)、过氧化氢酶(CAT)和碱性磷酸酶(AKP)活性(P0.05),相比对照组提高了40%~200%;与对照组相比,添加复合酶后B组和C组的溶菌酶(LZM)活性均显著提高(P0.05);酸性磷酸酶(ACP)活性随复合酶添加量的增加有所提高,但较对照组无显著差异(P0.05)。饲料中添加复合酶后,各组间蛋白酶活性无显著差异(P0.05);添加0.2%复合酶的C组,其淀粉酶活性显著高于对照组(P0.05);各添加组脂肪酶(LPS)活性均较对照组显著降低(P0.05),且随复合酶添加量的增加,脂肪酶的活性呈下降趋势。研究表明,饲料中添加一定量的复合酶可以改善刺参生长性能,提高刺参免疫酶和淀粉酶活性。  相似文献   

4.
在含有蝇蛆粉的基础饲料中添加0%、0.025%、0.050%、0.100%、0.200%和0.400%的甲壳素酶,制成6种等氮等能的饲料(分别记为E1、E2、E3、E4、E5、E6组),饲养泥鳅50 d,通过比较各饲料组泥鳅的生长性能和形体指标,研究蝇蛆粉替代鱼粉饲料中添加甲壳素酶对泥鳅生长性能和非特异性免疫力的影响。试验结果表明:饲料中添加0.025%~0.100%甲壳素酶可提高泥鳅的增重率(WGR)和特定生长率(SGR)(P0.05),降低饲料系数(FCR)(P0.05),其中0.100%组WGR和SGR最高,FCR最低。饲料中添加甲壳素酶对泥鳅的成活率(SR)、内脏指数(VSI)、肥满度(CF)和空壳率(DOR)无显著影响(P0.05)。饲料中添加0.050%~0.100%甲壳素酶可显著提高泥鳅肝脏和血清中超氧化物歧化酶(SOD)活性(P0.05);饲料中添加0.025%~0.100%甲壳素酶可显著降低泥鳅肝脏和血清中丙二醛(MDA)含量。综上所述,在本试验条件下,考虑生长性能、形态学指标和非特异性免疫指标,在含有蝇蛆粉的泥鳅饲料中甲壳素酶的适宜添加量为0.100%。  相似文献   

5.
为研究酵母对刺参(Apostichopus japonicus)肠道消化酶活性和肠道微生物的影响,在基础粉料中分别添加0%、1%、2%的高活性干酵母,在水温(16.0±2.0)℃,盐度(30.0±2.0)PSU条件下进行为期8周的养殖试验,结果表明,饲料中添加1%、2%的酵母均显著提高了刺参肠道淀粉酶的活性(P0.05);2%酵母组蛋白酶活性较对照组提高76.29%(P0.05);饲料添加酵母对脂肪酶活性无显著影响(P0.05)。添加干酵母能降低刺参肠道内异养菌总数、大肠杆菌数,其中2%酵母组的异养菌总数和大肠杆菌总数均显著降低,分别较对照组降低了51.47%和52.11%(P0.05);添加干酵母能显著降低刺参肠道内弧菌数(P0.05),并显著提高刺参肠道中酵母菌数含量(P0.05)。综上所述,酵母能提高刺参消化酶活性和改善肠道微生物群落结构,可作为刺参养殖的益生菌。  相似文献   

6.
本试验旨在研究饲料中添加微生态制剂对仿刺参生长、消化和免疫功能的影响。选用芽孢杆菌和乳酸菌为主要成分的微生态制剂,其活菌数为1.0×10^9CFU/mL,在配合饲料中分别按0(对照组)、10、20、30和40mL/kg的添加量添加,配制5种试验饲料,经混合放置9~12h后,投喂初始体重为(15.36±0.19)g的仿刺参30d。试验用仿刺参饲养在25L的塑料箱中,每箱中放置仿刺参10头,每种试验饲料投喂3箱仿刺参。结果显示:1)饲料中添加10、20mL/kg微生态制剂的试验组仿刺参各项生长指标均显著高于对照组(P<0.05),而饲料中添加30、40mL/kg微生态制剂的试验组仿刺参出现个体吐脏现象,吐脏率分别为13.33%、26.67%,微生态制剂的有益效果明显减弱。2)仿刺参消化道中蛋白酶、脂肪酶和淀粉酶活性随着微生态制剂添加量的增加均呈现先上升后下降的趋势,蛋白酶、脂肪酶、淀粉酶活性峰值分别出现在添加量为20、20、30mL/kg时。饲料中添加微生态制剂的4个试验组仿刺参体腔液中非特异性免疫酶活性均显著高于对照组(P<0.05),其中总超氧化物歧化酶(T-SOD)、过氧化氢酶(CAT)活性随着微生态制剂添加量的增加而上升,而溶菌酶(LZM)活性则随着微生态制剂添加量的增加先上升后下降,在添加量为30mL/kg时达到最高。由试验结果可知,当饲料中微生态制剂添加量不超过30mL/kg时,可有效促进仿刺参的生长和消化,提高仿刺参的免疫功能。  相似文献   

7.
本文探讨了植物源党参对仿刺参机体免疫功能和肠道消化功能的影响。试验过程中党参提取物以微胶囊制剂的形式,按照鼠尾藻粉质量的1%、2%、4%添加到基础饲料中,第14、28、42、56天取样测定体腔液免疫因子和肠道消化酶活性。结果显示:2%党参微胶囊制剂对仿刺参体腔细胞数量、吞噬活性及呼吸爆发活性有显著影响(P0.05),第28天活性最高。而且,体腔细胞上清液CLS中超氧化物歧化酶(SOD)、酸性磷酸酶(ACP)、一氧化氮合成酶(NOS)活性在第28天最高(P0.05),分别为67.4 U/mL,2.65 U/100 mL,10.9 U/mL,而酚氧化酶活性(PO)在第42天活性最高(P0.05),为77.7 U/mL。仿刺参肠道内容物蛋白酶、淀粉酶、褐藻酸梅活性在第28天最高,分别为62.8 U/g·min,57.8 U/100 mL,0.3 U/g·min,与对照组差异显著(P0.05)。投喂试验结束后,通过致病菌灿烂弧菌攻毒试验进行免疫增强剂党参的效果评价。结果显示:2%党参微胶囊制剂对仿刺参的免疫保护率最强,其累积死亡率仅有21.3%。故党参可通过提高仿刺参机体免疫因子活性和肠道消化酶活性,从而间接提高仿刺参抗病能力。  相似文献   

8.
本试验在刺参(Apostichopus japonicus)基础饲料中梯度添加酵母硒,研究其对刺参生长、抗氧化能力及夏眠前后刺参体壁硒含量的影响。试验在室内500 L的水槽中进行,以2龄刺参[初始体重为(140.00±0.21) g]为研究对象,随机分为5组,在基础饲料中分别添加不同水平[0(对照)、0.5、1.0、1.5和2.0 mg/kg]的酵母硒(饲料中总硒含量实测值依次为0.40、0.94、1.55、2.08和2.40 mg/kg),每组3个平行,每个平行放养11~14头刺参,每日投喂2次至表观饱食。试验共分为2个阶段,共计105 d。第1阶段:进行45 d的富硒饲料的饲养,待试验结束后测定增重率、抗氧化能力和体壁中硒的含量;第2阶段:于刺参夏眠结束后(有少量摄食及明显活动迹象即为夏眠结束,刺参室内夏眠期为60 d)进行取样,测定体壁中硒的含量。结果表明:1)随着饲料中酵母硒添加水平的提高,刺参生长和抗氧化能力均表现出先升高后下降的趋势。当饲料中添加0.5 mg/kg的酵母硒时,刺参的增重率具有最高值,且显著高于1.0 mg/kg组(P0.05),但与其他各组差异不显著(P0.05)。刺参体腔液中超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽转移酶(GSH-ST)、谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性及总抗氧化能力(T-AOC)随酵母硒添加水平的升高而下降,其中0.5 mg/kg组SOD、GSH-Px、GSH-ST活性与对照组相比无显著差异(P 0. 05),但均显著高于2. 0 mg/kg组(P 0. 05); 0. 5 mg/kg组丙二醛(MDA)含量与1.0 mg/kg组之间无显著差异(P0.05),但显著高于其他3组(P0.05);0.5 mg/kg组过氧化氢酶(CAT)活性显著高于对照组(P0.05),但与其他3组无显著差异(P0.05)。2)夏眠前后,刺参体壁中硒元素的富集随着饲料中酵母硒添加水平的增加而显著升高(P0.05)。与夏眠前相比,刺参夏眠结束后各组刺参体壁硒含量较夏眠前均呈现不同程度的衰减,但仍有50%以上的保留率,在1.0 mg/kg组中刺参夏眠结束后体壁中硒的保留率最低,为51.12%,在2.0 mg/kg组中硒的保留率最高,为91.38%。综上,饲料中添加0.5 mg/kg的酵母硒可以提高刺参的生长性能、抗氧化能力及体壁中硒的含量,而中高剂量(1.0~2.0 mg/kg)的酵母硒会降低刺参的增重率和抗氧化能力,虽然夏眠结束后刺参体壁中硒的含量均有衰减趋势,但各组均达到富硒刺参标准(水产动物富硒标准为硒元素含量为0.5~1.0 mg/kg)。  相似文献   

9.
体外诱导方法制备含有抗菌活性物质的柞蚕蛹粉,并将其以不同比例(0%、1.0%、2.0%)添加到刺参饲料中,并对照商品抗菌肽产品(0.5%添加),制成C、M1、M2和K几种等能、等氮饲料,探讨其在海参养殖中的应用可行性。结果发现,抗菌肽添加组(K)刺参的体增重率(82.06%)显著高于对照组(C)(64.77%)(P0.05),M1组比对照组提高13.4%,但差异不显著。免疫学指标测定中发现,刺参体腔细胞吞噬活性在各组间无显著差异,但各添加组体腔液超氧化物歧化酶(SOD),M2、K组溶菌酶(LSZ)和M1、M2组酸性磷酸酶(ACP)活性与对照组相比均表现出显著提高(P0.05),其中SOD活性M1、M2组和K组分别比对照组提高了40.24%、49.91%和61.49%;LSZ活性M2组和K组分别比对照组提高6.41%和5.48%;ACP活性,M1组和M2组分别比对照组提高了29.65%和37.34%。经体腔注射用灿烂弧菌(Vibrio splendidus)侵染各组健康刺参,三处理组刺参均表现出一定的对病原菌的抵抗力,但其中K组刺参的免疫保护率最高。电镜切片显示,柞蚕抗菌肽和免疫蛹粉可以提高小肠绒毛的长度,但2.0%免疫蛹粉则对小肠形态产生一定程度的破坏。综上,饲料添加1.0%柞蚕免疫蛹粉可有效促进刺参生长,并提高抗病力。  相似文献   

10.
本试验旨在研究酶制剂对刺参生长、体成分、免疫能力及氨氮胁迫下免疫酶活力和热休克蛋白70含量的影响。试验共配制粗蛋白质含量为20%的试验饲料5种,首先配制不含酶制剂的基础饲料作为对照,然后分别以0.04%木聚糖酶、0.10%纤维素酶、0.01%淀粉酶和0.15%复合酶(由0.04%木聚糖酶、0.10%纤维素酶和0.01%淀粉酶组成)等量替代基础饲料配方中的α-淀粉。每种饲料设3个重复,每个重复放养体重(4.02±0.04)g的幼参40头。试验期为56 d。结果表明:1)木聚糖酶、纤维素酶、淀粉酶、复合酶组的增重率分别比对照组提高了17.38%(P0.05)、7.63%(P0.05)、1.88%(P0.05)和20.75%(P0.05),特定生长率分别比对照组提高了0.25%/d(P0.05)、0.03%/d(P0.05)、0.01%/d(P0.05)、0.30%/d(P0.05)。2)饲料中添加木聚糖酶显著提高了刺参体壁粗蛋白质的含量(P0.05),添加纤维素酶、淀粉酶和复合酶显著提高了刺参体壁粗蛋白质、粗脂肪和粗灰分的含量(P0.05)。3)饲料中添加木聚糖酶、纤维素酶和复合酶显著提高了体腔液中过氧化氢酶的活力(P0.05);添加淀粉酶显著提高了体腔液中溶菌酶、超氧化物歧化酶、过氧化氢酶活力(P0.05)。4)在120 h氨氮胁迫过程中,各组体腔液中溶菌酶、超氧化物歧化酶、过氧化氢酶活力及热休克蛋白70含量基本呈先上升后下降趋势。除纤维素酶组外,其余加酶组体腔液中热休克蛋白70含量的最大值均高于对照组。综上,饲料中适量添加木聚糖酶、纤维素酶、淀粉酶或其复合酶均能显著促进刺参生长,改善体成分,提高免疫能力,木聚糖酶的促生长作用更明显,而淀粉酶的促免疫作用更明显。氨氮胁迫下,饲料中适量添加木聚糖酶、纤维素酶、淀粉酶或其复合酶均能使刺参更迅速和强烈地表现出免疫抵抗反应。  相似文献   

11.
本试验旨在研究饲料中添加肌肉生长抑制素抑制肽对海鲈生长性能、体组成、血清生化指标及肝脏与血清免疫指标的影响。以初始均重为(9.05±0.05)g的海鲈幼鱼为试验动物,暂养1周后,挑选规格一致的健康试验鱼480尾,随机分为4组,每组4个重复(水族箱),每个重复放养30尾鱼。4组试验鱼分别投喂肌肉生长抑制素抑制肽添加水平为0(对照)、0.25%、0.50%、0.75%的试验饲料135 d。结果显示:1)0.50%组的增重率(WGR)、特定生长率(SGR)和成活率(SR)均显著高于对照组(P0.05),各添加组的饲料系数(FCR)均显著低于对照组(P0.05),且以0.50%组的FCR最低;2)各添加组的背肌粗脂肪含量均显著低于对照组(P0.05),0.50%组的背肌粗蛋白质含量显著高于对照组(P0.05),全鱼的水分、粗蛋白质、粗脂肪、粗灰分和背肌的水分、粗灰分含量在各组之间没有显著差异(P0.05);3)0.25%组的血清总蛋白(TP)、白蛋白(ALB)和总胆固醇(TC)含量显著低于其他各组(P0.05),血清甘油三酯(TG)含量各组间不存在显著差异(P0.05);4)0.50%和0.75%组的血清碱性磷酸酶(ALP)活性显著高于对照组(P0.05),0.25%和0.50%组的肝脏溶菌酶(LZM)活性显著高于对照组(P0.05),肝脏与血清的总抗氧化能力(T-AOC)和肝脏超氧化物歧化酶(SOD)活性各组间不存在显著差异(P0.05)。综上所述,在饲料中添加肌肉生长抑制素抑制肽能够促进海鲈的生长并提高免疫能力,本试验条件下最适添加水平为0.50%。  相似文献   

12.
本试验旨在探讨饲粮中添加酵母壁多糖对断奶仔猪外周血免疫和肠道免疫的影响。采用单因素试验设计方法,选取21日龄遗传胎次、体重接近的断奶仔猪180头,随机分为4个组,每组5个重复,每个重复9头猪。4组分别饲喂饲粮中添加0(对照组)、0.15%、0.30%和0.45%酵母壁多糖的试验饲粮。试验期21 d。结果表明:1)与对照组相比,饲粮中添加0.15%、0.30%和0.45%酵母壁多糖显著提高了断奶仔猪血清免疫球蛋白A(IgA)含量(P0.05),饲粮中添加0.30%和0.45%酵母壁多糖显著提高了断奶仔猪血清免疫球蛋白G(IgG)含量(P0.05)。2)与对照组相比,饲粮中添加0.15%、0.30%和0.45%酵母壁多糖显著降低了断奶仔猪血清干扰素-γ(IFN-γ)含量(P0.05),饲粮中添加0.30%酵母壁多糖显著提高了断奶仔猪血清白细胞介素-10(IL-10)的含量(P0.05)。饲粮中添加酵母壁多糖对断奶仔猪血清白细胞介素-2(IL-2)、白细胞介素-6(IL-6)和肿瘤坏死因子-α(TNF-α)含量均无显著影响(P0.05)。3)与对照组相比,饲粮中添加0.30%和0.45%酵母壁多糖显著提高了断奶仔猪回肠CD4~+淋巴细胞含量(P0.05),饲粮中添加酵母壁多糖能一定程度提高断奶仔猪回肠CD8~+和CD20~+淋巴细胞含量,但差异不显著(P0.05)。由此可知,酵母壁多糖能一定程度提高断奶仔猪外周血免疫和肠道免疫,缓解断奶应激。  相似文献   

13.
活性酵母对脂多糖应激黄羽肉鸡肠道健康的影响   总被引:1,自引:0,他引:1  
本试验旨在研究活性酵母对脂多糖(LPS)应激黄羽肉鸡肠道健康的影响。选取480羽1日龄黄羽肉公鸡,随机分成6个组,分别为抗生素组(基础饲粮+0.025‰抗生素)、抗生素+LPS组(基础饲粮+0.025‰抗生素,注射LPS)、0.05%活性酵母组(基础饲粮+0.05%活性酵母)、0.05%活性酵母+LPS组(基础饲粮+0.05%活性酵母,注射LPS)、0.50%活性酵母组(基础饲粮+0.50%活性酵母)和0.50%活性酵母+LPS组(基础饲粮+0.50%活性酵母,注射LPS),每组8个重复,每个重复10只鸡。试验期56 d。抗生素+LPS组、0.05%活性酵母+LPS组和0.50%活性酵母+LPS组的试验鸡于21、23、25和27日龄每只鸡肌肉注射2 mL 0.2 mg/mL LPS,其余试验鸡肌肉注射等量生理盐水。于21和27日龄注射LPS或生理盐水后2、4、6、8、10、12和24 h测量试验鸡的直肠温度,并检测27和56日龄试验鸡的肠道细胞凋亡指数以及27、35和56日龄试验鸡的肠道食糜微生物数量和肠道形态结构。结果表明:1)与注射生理盐水相比,LPS刺激显著提高了21日龄注射后2 h和27日龄注射后2和4 h黄羽肉鸡的直肠温度(P0.05),显著降低了21日龄注射后12 h和27日龄注射后8 h黄羽肉鸡的直肠温度(P0.05);饲粮中添加活性酵母对黄羽肉鸡的直肠温度无显著影响(P0.05);饲粮中添加活性酵母与肌肉注射LPS对黄羽肉鸡的直肠温度无显著交互作用(P0.05)。2)与注射生理盐水相比,LPS应激显著提高了27日龄黄羽肉鸡的十二指肠和回肠细胞凋亡指数(P0.05);饲粮中添加活性酵母对黄羽肉鸡的肠道细胞凋亡指数无显著影响(P0.05);饲粮中添加活性酵母与肌肉注射LPS对黄羽肉鸡的肠道细胞凋亡指数无显著交互作用(P0.05)。3)与抗生素相比,饲粮中添加0.05%和0.50%的活性酵母显著提高了27、35和56日龄黄羽肉鸡回肠食糜酵母菌数量(P0.05);与注射生理盐水相比,LPS应激对黄羽肉鸡回肠和盲肠食糜微生物数量无显著影响(P0.05);饲粮中添加活性酵母与肌肉注射LPS对黄羽肉鸡肠道食糜微生物数量无显著交互作用(P0.05)。4)与抗生素相比,饲粮中添加0.50%活性酵母显著提高了35日龄黄羽肉鸡的空肠绒毛高度(P0.05);与注射生理盐水相比,LPS应激显著提高了56日龄黄羽肉鸡的十二指肠隐窝深度(P0.05);饲粮中添加活性酵母与肌肉注射LPS对黄羽肉鸡的肠道形态结构无显著交互作用(P0.05)。综上所述,LPS能成功诱导黄羽肉鸡的免疫应激反应,饲粮中添加活性酵母能够提高黄羽肉鸡肠道绒毛高度和食糜中酵母菌数量,改善肠道黏膜及菌群结构,但肌肉注射LPS与饲粮中添加活性酵母无显著交互作用。  相似文献   

14.
The purpose of this study was to evaluate the effects of dietary administration of the live yeast, Rhodotorula sp. C11, on growth and disease resistance against Vibrio splendidus infection in juvenile Japanese spiky sea cucumber Apostichopus japonicus. Sea cucumbers were fed diets containing Rhodotorula sp. C11 at 0 (control), 104, 105, and 106 CFU/g of feed for 45 d. There were three replicate tanks per dietary treatment. The specific growth rates were higher in all sea cucumbers treated with Rhodotorula sp. C11 than in the controls. Following a challenge with V. splendidus NB13, the cumulative prevalence and mortality of sea cucumbers fed diets supplemented with Rhodotorula sp. C11 were lower than in animals fed the basal diet. In sea cucumbers fed diets supplemented with Rhodotorula sp. C11 for 42 d, the only viable yeast found in the intestine was Rhodotorula sp. C11, which had counts of 1.58–1.98 × 104 CFU/g. No yeast was isolated from the intestine of animals fed the basal diet. For the colonization study, 20 sea cucumbers from each dietary treatment were removed to separate tanks and fed the control diet from day 16 to day 46. The viable yeast (Rhodotorula sp. C11) counts in the intestine decreased to 60–80 CFU/g by day 37. Moreover, as demonstrated by denaturing gradient gel electrophoresis, Rhodotorula sp. C11 colonization of the intestine could be detected until day 46. The differences in culture and PCR-denaturing gradient gel electrophoresis may be due to differences in the sensitivity of both methods. The present result showed that Rhodotorula sp. C11 was able to successfully colonize the intestine of juvenile Japanese spiky sea cucumbers by dietary supplementation, which improved its growth and disease resistance.

Received August 11, 2014; accepted November 14, 2014  相似文献   


15.
本试验旨在探讨豆粕替代鱼粉饲料中添加胆固醇和牛磺酸对凡纳滨对虾生长性能、肝胰腺和血清胆固醇含量及体成分的影响。配制6种等氮等能的试验饲料,1种为含30%鱼粉的高鱼粉饲料(FM组),另外5种为含12%鱼粉的低鱼粉高豆粕饲料(SBM1~5组),其中SBM1组不添加胆固醇和牛磺酸,SBM2和SBM3组分别添加0.3%和0.6%的胆固醇,SBM4组添加0.3%的胆固醇和0.2%的牛磺酸,SBM 5组添加0.6%的胆固醇和0.2%的牛磺酸。将初始体重为(0.35±0.01)g的凡纳滨对虾幼虾540尾随机分成6组,每组3个重复,每个重复30尾虾,进行为期8周的生长试验。结果表明:FM、SBM3、SBM4和SBM5组对虾的增重率(WGR)、特定生长率(SGR)和成活率(SR)显著高于SBM1组(P0.05),饲料系数(FCR)显著低于SBM1组(P0.05),其中以FM组对虾的WGR、SGR和SR最高,且FCR最低,但与SBM3、SBM4和SBM 5组无显著差异(P0.05)。SBM 3、SBM 4和SBM 5组对虾的血清和肝胰腺总胆固醇(TC)含量显著高于SBM1组(P0.05),但与FM组差异不显著(P0.05)。此外,SBM1组对虾的血清低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C)含量显著低于FM、SBM2、SBM3、SBM4和SBM5组(P0.05),血清高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)含量显著低于SBM 3和SBM 5组(P0.05)。对虾全虾水分和粗灰分含量各组间无显著差异(P0.05)。SBM1组对虾全虾粗蛋白质和粗脂肪含量显著低于FM、SBM3和SBM5组(P0.05),与SBM2和SBM4组相比无显著差异(P0.05)。根据本试验结果得出,低鱼粉高豆粕饲料中添加0.6%的胆固醇或同时添加0.3%的胆固醇和0.2%的牛磺酸能够有效地提高凡纳滨对虾的生长性能和饲料效率。  相似文献   

16.
本试验旨在研究青苔和大叶藻对刺参生长性能及免疫指标的影响。试验选取720头平均质量为0.35 g的刺参,随机分为3个组,每个组3个重复,每个重复80头刺参。以青苔、大叶藻和海带为主要藻类蛋白质源,分别制成3种不同配合饲料饲喂刺参,海带组为对照组,青苔组及大叶藻组为试验组。试验期8周。通过评估刺参的生长性能、体壁营养成分、消化酶活性及非特异性免疫指标评价青苔和大叶藻对刺参健康生长的影响。结果表明:青苔组和大叶藻组增重率较对照组分别增加了29.15%和24.13%,饲料系数较对照组降低了10.39%和15.58%,但各组间无显著差异(P0.05);青苔组和大叶藻组刺参脏壁比、肠重比显著低于对照组(P0.05),体壁水分含量显著高与对照组(P0.05);大叶藻组体壁粗灰分含量显著高于青苔组和对照组(P0.05);青苔组和大叶藻组刺参肠道淀粉酶活性显著低于对照组(P0.05);青苔组体腔液谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性显著高于对照组和大叶藻组(P0.05),过氧化物酶(POD)、超氧化物歧化酶(SOD)和酸性磷酸酶(ACP)活性均高于对照组和大叶藻组,但各组间无显著差异(P0.05);大叶藻组体腔液碱性磷酸酶(ALP)活性显著低于对照组(P0.05),与青苔组无显著差异(P0.05)。由此可见,在本试验条件下,青苔和大叶藻作为饲料原料应用于刺参饲料中是可行的;以生长性能指标为基础,结合抗氧化及非特异性免疫指标,刺参生长效果为青苔组大叶藻组海带组。  相似文献   

17.
以蛋氨酸锌为锌源,在等氮等能的基础饲料中添加不同水平的锌,配制实际锌含量分别为9.3、31.7、49.9、90.1、168.6和326.5 mg/kg的6种试验饲料,饲喂平均体重为(14.54±0.10)mg的方格星虫稚虫8周,用以研究饲料锌含量对方格星虫稚虫生长、体成分、体腔液中锌含量及碱性磷酸酶活性的影响。每种试验饲料设3个重复,每个重复饲喂400尾方格星虫稚虫。结果表明:饲料锌含量对方格星虫的成活率、增重率和特定生长率均有显著影响(P0.05),其中增重率和特定生长率均在饲料锌含量为49.9 mg/kg时达到最高值,并显著高于饲料锌含量最低(9.3 mg/kg)和最高(326.5 mg/kg)的组(P0.05)。饲料锌含量对虫体粗脂肪和粗灰分含量有显著影响(P0.05),虫体粗脂肪含量随着饲料锌含量的提高呈先增后降的趋势,而粗灰分含量的趋势则相反。饲料锌含量对虫体水分和粗蛋白质含量没有显著影响(P0.05)。饲料锌含量对虫体体腔液锌含量和碱性磷酸酶活性均有显著影响(P0.05)。虫体体腔液锌含量随着饲料锌含量的提高而不断上升,在饲料锌含量为326.5 mg/kg时达到最高值;而虫体体腔液中碱性磷酸酶活性则随着饲料锌含量的提高先上升后趋于稳定,当饲料锌含量为49.9 mg/kg时达到最高值。以增重率为评价指标,通过回归分析得出方格星虫稚虫饲料中适宜锌含量为41.93 mg/kg。  相似文献   

18.
本试验旨在探讨饲粮中添加白酒糟酵母培养物对产蛋鸡生产性能、免疫机能及肠黏膜结构的影响。选取324只27周龄、产蛋率和体重相近的健康海兰褐蛋鸡,随机分成3个组,每组6个重复,每个重复18只鸡。3组产蛋鸡分别饲喂添加0(对照)、1%和2%白酒糟酵母培养物的玉米-豆粕型饲粮,试验分为预试期1周和正试期8周。结果表明:1)各时间段内各组间产蛋率差异不显著(P0.05),但1%白酒糟酵母培养物组产蛋率在1~4周、5~8周和1~8周比对照组分别提高了1.79%、2.07%和1.93%;1%白酒糟酵母培养物组5~8周和1~8周的平均日采食量有高于对照组的趋势(P0.10)。2)在第4周末,2%白酒糟酵母培养物组血清球蛋白含量较对照组和1%白酒糟酵母培养物组分别提高了19.0%(P0.10)和27.2%(P0.05),1%和2%白酒糟酵母培养物组血清磷含量均显著高于对照组(P0.05)。3)在第4周末,与对照组和1%白酒糟酵母培养物组相比,2%白酒糟酵母培养物组血清免疫球蛋白G和免疫球蛋白M含量均显著提高(P0.05);在第8周末,与对照组相比,2%白酒糟酵母培养物组血清免疫球蛋白A和免疫球蛋白M含量显著提高(P0.05),1%白酒糟酵母培养物组血清溶菌酶活性显著提高(P0.05)。4)与对照组和2%白酒糟酵母培养物组相比,饲粮中添加1%白酒糟酵母培养物显著提高了产蛋鸡空肠绒毛高度和隐窝深度(P0.05),有提高绒毛高度/隐窝深度的趋势(P0.10)。综上可知,产蛋鸡饲粮中添加适量(1%~2%)白酒糟酵母培养物可增强免疫机能,改善肠黏膜结构。  相似文献   

19.
本试验旨在研究酿酒酵母和芽孢杆菌对育肥猪养分表观消化率、肠道形态结构和肠道免疫的影响。选取72头体重(62.50±0.83)kg的"杜×长×大"育肥猪,将其随机分为3组,每组4个重复,每个重复6头猪(公母各占1/2)。对照组饲喂基础饲粮,酿酒酵母组饲喂基础饲粮+0.5 g/kg活性干酵母制剂(酵母菌活菌数1.0×1010CFU/kg),芽孢杆菌组饲喂基础饲粮+0.1 g/kg芽孢杆菌制剂(芽孢杆菌活菌数1.0×109CFU/kg)。试验期56 d。结果表明:1)与对照组相比,芽孢杆菌组育肥猪钙和磷的表观消化率显著提高(P0.05),酿酒酵母组钙的表观消化率显著提高(P0.05);2)与对照组相比,酿酒酵母组育肥猪空肠隐窝深度极显著降低(P0.01),空肠绒毛高度/隐窝深度值极显著提高(P0.01);3)与对照组相比,芽孢杆菌组育肥猪空肠和回肠分泌型免疫球蛋白A(SIg A)含量均极显著上升(P0.01)。由此可见,饲粮中添加酿酒酵母和芽孢杆菌均可改善育肥猪对营养物质的消化吸收,其中酿酒酵母对育肥猪肠道形态结构具有一定的改善作用,而芽孢杆菌可提高肠道中的SIg A含量,提高肠道免疫水平。  相似文献   

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