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家畜卵母细胞冷冻保存研究进展 总被引：1，自引：0，他引：1
自Whittingham(1977)首次成功的报道冷冻-解冻的小鼠卵母细胞活仔以来，国内外诸多学者对家畜及人的卵母细胞冷冻保存进行了研究。目前，已有小鼠、家兔、牛等动物以及人的卵母细胞冷冻成功，并得到了后代。在国内，山羊、绵羊、猪等家畜的卵母细胞冷冻保存也已有报道。随着胚胎工程技术的不断发展，卵母细胞的冷冻保存越来越受到重视，这将推动卵母细胞的冷冻保存取得更大进展。 相似文献
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小鼠卵母细胞冷冻保存技术研究进展 总被引：1，自引：0，他引：1
毛寿林 《养殖与饲料．饲料世界》2008,(2):5-7
卵母细胞的冷冻保存是动物繁殖技术领域生殖细胞冷冻的研究热点。在此介绍了小鼠卵母细胞冷冻保存的研究进展，阐述了小鼠卵母细胞冷冻保存的原理，探讨了冷冻保护剂的作用机理。最后，对小鼠卵母细胞的冷冻保存方法及其原理进行了概括。 相似文献
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家畜卵母细胞冷冻保存研究进展 总被引：4，自引：0，他引：4
自Whittingham(1977)首次成功的报道冷冻-解冻的小鼠卵母细胞活仔以来,国内外诸多学者对家畜及人的卵母细胞冷冻保存进行了研究。目前,已有小鼠、家兔、牛等动物以及人的卵母细胞冷冻成功,并得到了后代。在国内,山羊、绵羊、猪等家畜的卵母细胞冷冻保存也已有报道。随着胚胎工程技术的不断发展,卵母细胞的冷冻保存越来越受到重视,这将推动卵母细胞的冷冻保存取得更大进展。1抗冻保护剂在卵母细胞和胚胎的冷冻保存时,需使用抗冻保护剂,它可以改变细胞在冷冻过程中的物理化学环境,减轻或避免冷冻、解冻过程中的冷冻损伤。抗冻保护剂主要为一… 相似文献
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卵母细胞冷冻保存技术在动物种质资源保存、濒危动物保护等方面具有独特的作用,猪卵母细胞的冷冻保存仍是一项世界性难题,尚处于摸索阶段。现就猪卵母细胞冷冻保存的现状、冷冻原理与方法及冷冻损伤等问题进行综述。 相似文献
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家畜卵母细胞冷冻保存的研究进展 总被引：1，自引：1，他引：0
本文阐述了卵母细胞冷冻保存对体外受精、转基因动物研究及人类医疗方面的意义,论述了卵母细胞冷冻保存的发展过程、方法与机理及冷冻保护剂种类,通过揭示冷冻、解冻对细胞的作用,进一步探讨了各种冷冻保护剂及冻存方法对保持细胞生命力的功效。在当前卵母细胞冷冻研究中,玻璃化冷冻法发展迅速,并出现超快速玻璃化法。 相似文献
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1977年,Whittingham 首次用-196℃保存的小鼠成熟卵母细胞培育出后代。目前,小鼠成熟卵母细胞的冷冻保存方法已趋于完善。1986年,Chen 第一次报道冷冻人成熟卵母细胞成功,获双胎妊娠。家畜的卵母细胞冷冻保存研究起步较晚,但随着卵母细胞体外成熟、体外受精、细胞核移植、基因转移等,以卵母细胞为材料的生物技术的迅猛发展,人们对超低温冷冻保存家畜卵母细胞的兴趣大增,渴望象建立“精子库”和“胚胎库”那样,建立起“卵子库”,以充分利用屠宰母畜尤其是 相似文献
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卵巢玻璃化冷冻是一种操作简单、冷冻效果好的卵巢组织冷冻降温技术,对动物繁殖能力保存、物种保护、生物多样性保存,以及动物胚胎工程和人类临床医学研究与应用等具有重要意义。卵巢组织冷冻保存较卵母细胞冷冻保存,具有明显的优点。在冷冻保护剂的选择、冷冻材料、冷冻平衡及冷冻方法上都有其特殊之处。卵巢组织冷冻保存技术已在人类医学临床上发挥其应用价值。 相似文献
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卵母细胞冷冻保存对于畜牧业生产和人类辅助生殖具有重要意义。随着玻璃化冷冻技术日趋成熟，其现已广泛应用于牛、羊等大家畜的卵母细胞冷冻保存。然而，猪卵母细胞的冷冻保存至今仍处于试验研究阶段，由于猪卵母细胞脂质含量高，对低温敏感，在玻璃化冷冻保存过程中极易受到冷冻保护剂毒性以及渗透胁迫、氧化应激等损伤，造成细胞骨架以及亚细胞器受损，最终导致细胞发育能力降低甚至死亡。近年来，人们在提高猪卵母细胞冷冻保存效率的研究中取得了突破性进展。本文简要介绍了卵母细胞冷冻保存的常见方法及作用机理，总结了猪卵母细胞在玻璃化冷冻过程中造成的细胞损伤类型及影响，概述了人们针对不同类型的冷冻损伤提出的解决方法和取得的成就，并对其应用前景进行展望，为今后提高猪卵母细胞的玻璃化冷冻效率提供新思路。 相似文献
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随着辅助生殖技术的发展,配子与胚胎的超低温冷冻保存已成为动物种质资源保存的新热点,有可能在相当程度上替代活畜保种。但由于猪卵母细胞中含有大量脂滴,对低温敏感,耐受性差,给猪卵母细胞的冷冻保存带来很大的困难。目前还没有关于猪卵母细胞冷冻-解冻后经体外受精,然后移植产仔的成功报道,其原因可能是冷冻破坏了细胞骨架的结构。因此本文主要分析了冷冻保存对猪卵母细胞细胞骨架及其冻融后发育潜力的影响。 相似文献
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哺乳动物卵母细胞和胚胎的超低温冷冻保存技术,是胚胎移植、体外受精、转基因和克隆等生物技术不可缺少的部[1].Rall和Fahy于1985年首次报道了用玻璃化方法来冷冻保存小鼠胚胎,这种方法不仅大大简化了冷冻过程,而且减少了由于细胞冰晶形成所引起的一系列物理及化学损伤,提高了冷冻效率[2]. 相似文献
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采用PBS作为冷冻基础液,分别用甘油和二甲基亚砜(DMSO)作为冷冻保护液,在程序化冷冻保存和玻璃化冷冻保存条件下,研究小鼠生发泡期(GV期)卵母细胞的抗冻能力。结果表明,2种冷冻方法对小鼠GV期卵母细胞解冻后形态正常率和存活率无显著影响(P>0.05)。冷冻保护剂种类对小鼠GV期卵母细胞解冻后形态正常率无显著影响(P>0.05);但对存活率有显著影响,玻璃化冷冻采用二甲基亚砜作为冷冻保护液效果极显著优于甘油(P<0.01)。以冷冻效果较好的二甲基亚砜作为冷冻保护液,采用玻璃化冷冻不同发育阶段(GV期和MⅡ期)的小鼠卵母细胞,解冻后形态正常率无显著差异(P>0.05),但存活率GV期要显著优于MⅡ期卵母细胞(P<0.05)。 相似文献
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5-6周龄雌性昆明小鼠的成熟卵母细胞,在不同前处理液(10% EG或10% EG 10% DMSO)中平衡5 min,然后在冷冻溶液(EFS30、EFS40、EDFS30或EDFS40)中平衡30 s后进行开放式拉长麦管法(OPS,open pulled straw)和固体表面冷冻法(SSV,solid-surface vitrification)玻璃化冷冻保存研究.试验结果表明:玻璃化冷冻中,多种抗冻保护剂组合使用的效果优于使用单一抗冻保护剂,而且EDFS冷冻液冷冻保存小鼠卵母细胞的效果好于EFS,尤其是EDFS30;SSV法冷冻保存小鼠成熟卵母细胞效果优于OPS法. 相似文献
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探讨程序化冷冻与玻璃化冷冻对小鼠GV期卵母细胞及二细胞期胚胎的复苏率及其发育潜能的影响。通过小鼠的卵母细胞与早期胚胎的不同冷冻方法的比较,为后续阿旺绵羊的胚胎冷冻保存提供参考。采用程序化冷冻与玻璃化冷冻技术,分别冷冻小鼠GV期卵母细胞及二细胞期胚胎,复苏后培养,比较不同冷冻处理后的复苏率、成熟率与囊胚率。小鼠GV期卵母细胞程序化冷冻复苏率(48.00%±5.29%)显著低于玻璃化冷冻复苏率(65.00%±5.00%),有统计学差异(P=0.0147<0.05);而程序化冷冻后复苏卵母细胞的发育成熟率略高于玻璃化冷冻组,但无统计学意义。小鼠二细胞期胚胎程序化冷冻组复苏率(76.00%±2.00%)显著高于玻璃化冷冻组复苏率(70.00%±2.00%),有统计学差异(P=0.0213<0.05);冷冻后复苏胚胎发育的囊胚率程序化冷冻略低于玻璃化冷冻及对照组,但无统计学意义。 相似文献
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自从 Polgy、Wmith 和 Porkes 首次发现冷冻保存精子的方法后,就引起了繁殖工作者冷冻保存哺乳动物卵子和胚胎的兴趣。1972年 Whittmghan 首次报道鼠胚胎冷冻成功,在-196℃保存小鼠胚胎移入受体有29%产仔。不久,Wilmut 也报道了鼠胚胎冷冻成功。1973年 Wilnnut 和 Rosuson 第一次报道冷冻牛胚胎得到一头犊牛。从此,冷冻保存哺乳动物胚胎的研究才不断开展。开始,对实验室动物研究较多,后来转到了家畜方面,迄今已用冷冻保 相似文献
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试验首次采用OPS法玻璃化冷冻小鼠GV期卵母细胞(不带卵丘细胞,下同),同时尝试用EDFS30对小鼠卵巢进行细管法玻璃化冷冻,以研究GV期卵母细胞冷冻后的发育潜力。首先,利用MEM培养和MEM-腔前卵泡培养新鲜GV期卵母细胞,并把较好的培养方式用于冷冻后培养试验。2种培养方式培养24h后新鲜GV期卵母细胞成熟率无显著性差异;OPS法冷冻的GV期卵母细胞解冻后成熟率及体外受精后卵裂率与对照组差异不显著(P>0.05)。细管法冷冻卵巢组织的GV期卵母细胞成熟率极显著低于对照组(P<0.01),其受精后未获得受精卵。结果表明:OPS法可有效地冷冻保存小鼠GV期卵母细胞,而细管法冷冻小鼠卵巢对GV期卵母细胞损伤较大。 相似文献
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试验选用5-6周龄雌性昆明小鼠的成熟卵母细胞，在不同前处理液（10％EG或10％EG＋10％DMSO）中平衡5min，然后在冷冻溶液（EFS30、EFS40、EDFS30或EDFS40）中平衡30s后进行OPS法和SSV法玻璃化冷冻保存。试验结果表明：（1）小鼠成熟卵母细胞的OPS法冷冻保存，用EFS冷冻的卵母细胞解冻后形态正常率为75．8％，激活后卵裂率为47．8％；在EDFS30中冷冻保存，解冻后形态正常率为87．2％，卵裂率为62．0％；在EDFS40中冷冻保存，解冻后形态正常率为86．6％，卵裂率为57．4％，与对照组（99．0％和80．5％）相比，差异极显著（P〈0．01）。（2）小鼠成熟卵母细胞的SSV法冷冻保存，用EFS冷冻的卵母细胞解冻后形态正常率为82．7％，卵裂率为47．1％；在EDFS30中冷冻保存，解冻后形态正常率为91．5％，卵裂率为57．5％；在EDFS40中冷冻保存，解冻后形态正常率最高为85．1％，卵裂率为55．9％，与对照组（99．0％和80．5％）相比，差异极显著（P〈0．01）。（3）OPS法和SSV法冷冻小鼠成熟卵母细胞解冻后形态正常率为86．5％和91．6％，卵裂率为53．8％和55．6％．与对照绢相比。差异极显著（P〈0．01）。 相似文献
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卵母细胞超低温冷冻保存在人工辅助生殖和畜牧业上已有广泛应用。然而，超低温冷冻保存造成卵母细胞活性氧大量累积，引发一系列氧化应激，最终导致卵母细胞体内外发育潜力下降。卵母细胞内源的抗氧化酶无法彻底对抗氧化应激，因此在冷冻过程中常添加外源抗氧化剂来减少氧化损伤。文章着重分析了冷冻诱导卵母细胞产生的各种氧化应激、抗氧化剂对抗氧化损伤的效果及其作用机制，为提高卵母细胞冷冻保存效率提供参考。 相似文献