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1.
[目的]对蝴蝶兰种子诱导原球茎和芽苗再生的条件进行研究。[方法]建立蝴蝶兰种子无菌播种高效萌发体系,以及原球茎诱导和芽苗再生的培养体系,对其各生长阶段的培养基以及所添加的激素组合及浓度进行选择。[结果]对种子萌发来说,选择授粉后120d未开裂的蝴蝶兰果荚内的种子播种为宜;最适培养基pH值为5．2～5．6。蝴蝶兰种子萌发最适宜的培养基为：花宝1号（300倍稀释）＋3mg／L6-BA4-0．1mg／LNAA＋20g／L蔗糖＋2g／L蛋白胨＋0．2％活性炭＋6g／L琼脂;在此条件下,蝴蝶兰的萌发率最高达65％。培养基中添加活性炭能有效防止蝴蝶兰芽苗的褐化现象．添加蛋白胨能促进蝴蝶兰种子萌发和幼苗的生长。[结论]该方法研究了蝴蝶兰种子诱导原球茎和芽苗再生的培养条件,为蝴蝶兰的种质栽培提供了理论依据。 相似文献
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蝴蝶兰种子胚组织培养优化技术研究 总被引：4，自引：0，他引：4
以蝴蝶兰种子胚为外植体,探讨了不同采收期、不同培养基以及在培养基中添加多种附加物对原球茎形成和成苗的影响。结果表明:授粉后120~150 d的成熟种子胚适宜于组织培养,以花宝1号为基本培养基,附加椰子汁、香蕉、土豆汁能很好地诱导原球茎,诱导率达95%以上。添加有机附加物对不同花色的蝴蝶兰品种的培养效果不同,不添加植物生长调节剂也有利于种子萌发。用花多多4号3~4 g/L+Tryptone 2~2.5 g/L+1/3MS+6BA 1.0 mg/L+NAA 0.02 mg/L+CW 100 g/L+AC 0.5~1.0 g/L有利于原球体和幼苗的生长,成苗率达90%以上。 相似文献
3.
大花蕙兰胚培养技术研究 总被引：1，自引：0，他引：1
研究了不同培养基对大花蕙兰种子原球体的诱导及生长状况的影响。结果表明:花宝(Hyponex N-P-K=6.5-6-19)3.00 g/L+蛋白胨2.00 g/L+活性炭2.00 g/L+蔗糖20.00 g/L+琼脂7.50 g/L+10%椰乳最适宜对大花蕙兰种子进行原球体的诱导,而花宝(Hyponex N-P-K=6.5-6-19)3.00 g/L+蛋白胨2.00 g/L+蔗糖50.00 g/L+10%椰乳+NAA 1.00 mg/L最适宜大花蕙兰的壮苗与生根;椰乳对大花蕙兰的生长有明显的促进作用。 相似文献
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蝴蝶兰的组织培养技术研究 总被引：6，自引：0，他引：6
以蝴蝶兰的叶片、花梗腋芽、花梗节间、茎尖、根尖为外植体,通过对蝴蝶兰组织培养的不同类型的基本培养基及各种激素配比进行组合试验,筛选出蝴蝶兰组织培养的最适外植体及其培养基配方。试验结果表明：花梗腋芽是蝴蝶兰组培的最佳外植体,其理想培养基配方为：1／2MS＋2mg/L6-BA＋0．2mg/L NAA＋0．3％Ac＋20g/L蔗糖＋8g／L琼脂,原球茎诱导率可达72．9％。 相似文献
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蝴蝶兰无菌播种及快繁技术研究 总被引：2，自引：0，他引：2
以蝴蝶兰无菌种子为材料,对蝴蝶兰种子消毒和萌发、原球茎诱导、增殖和分化培养、芽生根培养基、壮苗培养基配方进行研究。结果表明,种子经次氯酸钠和洗衣粉消毒,有利于促进种子萌发和原球茎的形成;最适合种子萌发的培养基为MS＋香蕉泥100g/L＋马铃薯50g/L＋NAA 0.5mg/L;原球茎的形成及增殖培养以MS＋6-BA 2.0mg/L＋NAA0.1mg/L＋香蕉泥100g/L为佳,分化培养基为MS＋6-BA 0.1mg/L＋NAA 0.1mg/L＋香蕉泥80g/L＋蔗糖20g/L＋活性炭2.0g/L＋卡拉胶7.0g/L。小苗生根培养基为MS＋NAA 0.1mg/L＋香蕉泥100g/L＋蔗糖20g/L＋卡拉胶7.0g/L＋活性炭2.0g/L,生根率达98%以上;壮苗培养基为MS＋香蕉泥80g/L＋马铃薯汁50g/L＋蔗糖20g/L＋卡拉胶7.0g/L＋活性炭2.0g/L。经过适当驯化处理,将壮苗移栽到疏松的水草或苔藓基质中,注意温度、湿度及光照管理,成活率可达90%以上。 相似文献
6.
本试验以盆栽蝴蝶兰‘火鸟’为材料,采用常规杂交方法获取果荚。果荚采后进行消毒处理,采用不同培养基对种子胚进行无菌播种试验,筛选最佳种子胚播种培养基。结果表明：果荚采摘最佳时间为授粉后120d,采用75％酒精30s和O．1％升汞6min的消毒处理污染率最低,花宝1号2．0g／L＋蛋白胨2．Og／L＋肌醇O．1g／L＋磷酸三钙0．1g／L＋香蕉汁100g／L＋蔗糖20g／L＋琼脂7．0g／L是蝴蝶兰无菌播种的最佳培养基。 相似文献
7.
采用1/2MS培养基,以蝴蝶兰果荚为外植体进行快速繁殖的研究.对蝴蝶兰快速繁殖各阶段的条件进行了优化,结果表明,最佳外植体为果荚,培养基的最适pH为5.8;各阶段最佳培养基浓度,诱导原球为1/2MS＋ 2.0 mg/L 6-BA＋ 0.5 mg/L NAA,原球茎增殖为1/2MS＋3.0 mg/L 6-BA＋0.2 mg/L NAA,诱导原球茎分化为1/2MS＋ 1.0 mg/L 6-BA＋0.2 mg/L NAA,诱导生根为1/2MS＋ 0.6mg/L IBA.此外,培养基中还需加入10％的香蕉泥上清液、蔗糖2％、琼脂0.8％、活性炭2.0 g/L效果最好. 相似文献
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蝴蝶兰组织培养快速繁殖技术研究 总被引：2，自引：0，他引：2
[目的]对蝴蝶兰的组织培养快速繁殖技术进行研究,为蝴蝶兰的批量生产提供参考。[方法]以蝴蝶兰嫩叶、茎尖、花梗侧芽为外植体,进行蝴蝶兰原球茎诱导、增殖及试管苗生根的组织培养。[结果]结果表明,MS＋2．0mg／L6-BA＋1．0ng／LNAA＋200ml／L椰乳是诱导蝴蝶兰原球茎形成的最佳培养基,茎尖诱导率迭缸．37％;MS＋1．0mg／LNAA＋2．0mg／L6-BA是蝴蝶兰原球茎增殖的最佳培养基,增殖系数达9．62;1／2MS是蝴蝶兰生根培养的最佳培养基,生根率达94．42％,且根生长最快最整齐。[结论]在生产上,可采用试管苗生根继代培养的方法进行蝴蝶兰的快速繁殖。 相似文献
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金边蝴蝶兰的叶片培养 总被引：6，自引：0，他引：6
以金边蝴蝶兰花梗诱导产生的花梗芽的叶片为外植体，不经过原球茎途径，由叶片直接诱导不定芽进行快速繁殖。比较了叶片在不同培养基上的诱导效果，结果表明：在MS 6-BA 5mg／L NAA 1mg／L＋CW(椰子水)100mL／L上的诱导率约为32．8％，不定芽在由Hyponex(7-6-19)3g／L 胰蛋白胨1g/L 活性炭1g／L 香蕉泥100g／L IBA 1mg/L NAA 0．5mg／L组成的培养基上生根率为95％。 相似文献
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对蝴蝶兰组织培养快繁技术的优化进行了较系统的研究,建立了蝴蝶兰花梗组织培养技术体系。主要包括：用腋芽启动的幼嫩花梗,以MS＋3．0mg／L6-BA培养出芽率最高,达90％以上;MS＋5．0mg／L6-BA＋0．5mg／LNAA诱导茎尖原球茎状体,诱导率最高,达100％;原球茎状体增殖的最佳培养基为MS＋3．0mg／L6-BA＋0．2mg／LNAA＋1．5％o活性炭,增殖系数达2。3;添加6-BA和NAA的1／2MS培养基有利于生根,平均根数达到3．2条;过渡培养能够提高蝴蝶兰组培苗移栽成活率。 相似文献
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《福建农业科技》2012,(3)
以蝴蝶兰品种＂V31＂为试验材料,研究了消毒时间、基本培养基、外源激素对花梗腋芽诱导的影响,以及外源激素和有机添加物对丛生芽增殖及生根壮苗的影响,结果表明：以0.1%氯化汞溶液消毒处理8 min,花梗腋芽诱导率最高,为85.19%;以1/2MS为基本培养基,花梗腋芽诱导率显著高于MS基本培养基;在1/2MS＋NAA0.5 mg/L＋椰汁100 ml/L＋蔗糖30 g/L＋琼脂7 g/L培养基上,添加6-BA 5.0 mg/L的处理,增殖系数最高,为5.53;在1/2MS＋6-BA 5.0 mg/L＋NAA 0.5 mg/L＋蔗糖30 g/L＋琼脂7 g/L培养基上,添加椰汁100 ml/L处理的增殖系数显著高于添加土豆泥、香蕉泥的处理。无根苗接种于1/2 MS＋土豆泥80 g/L＋蔗糖20 g/L＋琼脂7 g/L,添加NAA 0.5 mg/L处理的生根数和叶片数显著高于其他处理,分别为4.39条和3.03片;在1/2 MS＋NAA 0.5 mg/L＋蔗糖20 g/L＋琼脂7 g/L培养基上,添加80 g/L土豆泥的处理,生根数和叶片数显著高于添加椰汁、香蕉泥的处理。 相似文献
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以蝴蝶兰嫩叶、茎尖、花梗侧芽、花梗节间为外植体,进行原球茎诱导,探求蝴蝶兰组织培养的最适外植体;通过不同培养基及各种激素配比组合进行原球茎诱导、增值及试管苗生根试验,探索各阶段最优培养基配方。结果表明：茎尖和花梗腋芽是蝴蝶兰形成原球茎的较佳外植体;MS＋0.5 mg/L NAA＋1.0 mg/L 6-BA＋100ml/L椰乳是蝴蝶兰原球茎增殖的最佳培养基,增殖系数达8.98;1/2 MS培养基最利于侧芽萌发形成丛生芽;生根最适培养基为1/2MS＋1.0mg/LIBA＋0.5 mg/LNAA。 相似文献
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优良八仙花品种(Hydrangea serrata‘Preziosa’)的离体培养与快速繁殖 总被引：1，自引：0，他引：1
以八仙花当年生茎段为外植体,进行离体快速繁殖技术研究。结果表明：无菌芽诱导的适宜培养基为改良MS＋BA1．0mg／L＋NAA0．1mg／L＋CH0．5g／L十蔗糖30g／L＋琼脂粉6．0g／L,诱导率为97．2％;芽增殖的适宜培养基为改良MS＋BA1．0mg/L＋蔗糖30g/L＋琼脂粉6．0g/L,增殖系数达6．1;生根的适宜培养基为1／2MS＋IBA0．3mg／L＋蔗糖20g/L＋琼脂粉6．0g／L,试管苗在该培养基上根系生长良好,生根率达100％。 相似文献
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【目的】探讨不同激素对番木瓜实生苗茎段分化的影响,为提高番木瓜繁育效率提供参考依据。【方法】番木瓜种子采用直接接种、无菌水处理18 h后接种等4种方式预处理获得最佳种子处理方式;再以获得的实生苗茎段为外植体进行芽诱导培养基、增殖壮苗培养基、生根培养基的优化筛选。【结果】经6-BA 1.0 mg/L与GA31.0 g/L等体积混合液浸泡18 h后接种的番木瓜种子发芽率高达93.3%,接种培养后污染率低至3.3%;适合番木瓜茎段芽诱导培养基为MS＋6-BA 0.5 mg/L＋NAA 0.2 mg/L,增殖壮苗培养基为MS＋6-BA 0.2 mg/L＋NAA 0.1 mg/L＋蔗糖40.0 g/L,增殖系数最高达4.3,生根诱导培养基为MS＋IBA 1.0 mg/L＋KT 0.05 mg/L＋AC 2.0 g/L。【结论】MS＋6-BA 0.5 mg/L＋NAA 0.2 mg/L、MS＋6-BA 0.2 mg/L＋NAA 0.1 mg/L＋蔗糖40.0 g/L和MS＋IBA 1.0 mg/L＋KT 0.05 mg/L＋AC 2.0 g/L分别作为番木瓜实生苗茎段芽诱导、增殖壮苗和生根诱导培养基,可提高番木瓜实生苗茎段组培育苗效率。 相似文献
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【目的】建立三褶虾脊兰（Calanthe triplieata）无菌播种快繁技术体系。【方法】以三褶虾脊兰种子为外植体,采用种子→原球茎→完整植株途径,探讨不同组合（0．5mg／L6-BA、0．1mg／LNAA和1．0g／LAC）、附加物[椰汁（CM）、土豆泥、香蕉泥]及基本培养基（花宝1号、1／2花宝1号、MS和1／2MS）对三褶虾脊兰种子萌发、原球茎诱导、增殖、分化、生根的效果,筛选适宜的培养基。【结果】成熟种子在1／2花宝1号＋0．5mg／L 6-BA＋0．1mg／L NAA＋200ml/L CM＋1．0g／L AC＋20．0g／L蔗糖培养基中培养150d左右可形成原球茎,萌发率超过80％以上;诱导原球茎在1／2MS＋100mL／LCM＋2．0mg／L6-BA＋0．1mg／LNAA＋1．0g／LAC＋20．0g／L蔗糖培养基上的增殖效果最好,增殖率为4．5;原球茎接种于花宝1号＋0．1mg／L6-BA＋0．1mg／LNAA＋100．0g／L土豆泥＋1．0g／LAC＋20．0g／L蔗糖培养基上分化培养40d后,再转入花宝1号＋0．1mg／LNAA＋100．0g／L土豆泥＋2．0g／LAC＋20．0g／L蔗糖培养基上培养40d,可诱导形成完整植株。在花宝1号培养基中添加NAA和土豆泥或香蕉泥,原球茎生根率均达100．0％,但土豆泥的成本最低。【结论】建立了比较完善的王褶虾脊兰无菌播种和快繁技术体系,为其种质资源保护、种苗繁育以及产业开发提供技术支持。 相似文献
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以新农1号狗牙根成熟种子为外植体，通过种子划破处理、不同激素浓度组合对种子发芽及愈伤组织诱导，不同继代培养基对愈伤组织增殖和质量影响的研究，结果表明：与未切割的新农1号狗牙根种子相比，切割后的新农1号狗牙根种子发芽率和愈伤组织诱导率均有显著提高，种子发芽率平均提高21％，愈伤组织诱导率平均提高14％，出愈时间提早5～10d；愈伤组织诱导中，添加4．00mg／L 2，4-D＋1．00mg／L 6-BA的诱导培养基所形成的愈伤组织质量较优；继代改造培养基中添加6％蔗糖＋0．50mg／L 2，4-D有利于胚性愈伤组织的生长，其分化率达50％。 相似文献
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取蝴蝶兰不同的外植体进行诱导,筛选出花梗诱导营养芽最适宜培养基配方为MS＋10mg/L6-BA,根尖诱导原球茎最适宜培养基配方为MS＋5mg/LNAA＋10mg/LKT,叶片诱导原球茎最适宜培养基配方为MS＋6-BA5mg/L＋NAA2mg/L＋香蕉泥200mg/L＋椰子汁100ml/L,丛生芽继代最佳培养基配方为MS＋6-BA5mg/L＋NAA0.5mg/L＋椰子汁100ml/L,扎根最适宜培养基配方为MS＋IBA1.0mg/L＋NAA0.5mg/L＋香蕉泥150mg/L＋椰子汁100ml/L,并且就不同栽培基质对移栽成活率的影响做了深入的研究。 相似文献
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实验以荞麦子叶节为研究对象,摸索其再生所需的最适条件,建立荞麦的再生体系,为荞麦的转基因研究奠定基础.实验结果表明：种子萌发条件为去掉外种皮的种子用0.1％升汞灭菌1min,30g/L蔗糖＋7.5g/L琼脂粉的固体培养基培养.子叶节诱导生芽最适培养基为MS＋2.5mg/L6-BA＋0.05mg/LNAA＋30g/L蔗糖＋7.5g/L琼脂粉,芽诱导生根的培养基为1/4MS ＋6-BA （2.0mg/L） ＋NAA （0.05mg/L） ＋30g/L蔗糖＋7.5g/L琼脂粉. 相似文献