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61.
硬叶兜兰的无菌播种和试管成苗 总被引:1,自引:0,他引:1
以硬叶兜兰的种子为试材,研究种子成熟度、种子预处理以及培养基成分对种子萌发、原球茎分化以及试管成苗的影响。结果表明:果龄110~210 d的种子经处理后均能够萌发,其中150 d的萌发率最高,达40%。10%的84消毒液预处理对种子萌发有显著促进作用,在5~20 min范围内,以11 min处理获得最佳萌发效果;处理时间20 min时萌发率最低,为11%。1/5MS基本培养基较花宝培养基有更高的萌发率,添加AgNO31 mg/L利于原球茎分化及试管苗的发育。 相似文献
62.
六种兜兰属植物的叶面积和叶幅与开花的关系 总被引:1,自引:0,他引:1
测定了硬叶兜兰、杏黄兜兰、麻栗坡兜兰、长瓣兜兰、红旗兜兰及根茎兜兰6种兜兰的开花植株和非开花植株的叶片数、叶面积、叶幅及花器官大小等形态性状,利用Logistic模型分析了叶片数、叶面积及叶幅与开花与否的关系。结果表明:6种兜兰个体是否开花与叶面积和叶幅都有极显著的相关性,经回归方程计算,硬叶兜兰、杏黄兜兰、麻栗坡兜兰、长瓣兜兰、红旗兜兰及根茎兜兰开花的叶面积阈值(P=50%)需要达到48.88、75.55、141.75、243.42、49.02、151.94cm~2;而叶幅阈值则要达到15.87、15.76、21.51、36.85、17.99、39.06cm,表明兜兰属植物植株个体的叶面积或叶幅要达到一定大小才可以进入生殖生长。利用叶面积大小及叶幅与开花显著相关的指标,可以判定兜兰植株是否完成幼年期进入成熟期。此外,杏黄兜兰、麻栗坡兜兰、长瓣兜兰的开花与否与叶片数也有显著的相关性,叶片数也可以成为指示是否可能开花的指标。 相似文献
63.
广西木论国家级自然保护区麻栗坡兜兰群落特征初步研究 总被引:1,自引:0,他引:1
运用群落学的调查方法,对广西木论国家级自然保护区麻栗坡兜兰的种群生存环境、种群结构和空间分布等群落学特征进行了初步调查分析。结果表明:麻栗坡兜兰产地的气候、植被、土壤和其它环境因子与麻栗坡兜兰的生存有着密切的关系,以聚集群居生长,分布于石灰岩森林的岩石宽缝中的积聚较多富含腐殖质的腐叶土层上。凡生长在保存度完好的森林环境且腐质层土厚度大于8cm的条件下,其植株长势旺盛,叶片肥厚、宽大。研究区内植物群落的科、属组成以单种属为主,属的成分与热带、亚热带的关系密切。麻栗坡兜兰生存与环境的关系以及导致濒危的原因还需更进一步研究。 相似文献
65.
一种高寒独特野生兜兰,在其北陲黑河大小兴安岭发现投放市场,引起兰花专家和兰花爱好者的极大关注。一般兰花都生长在亚热带或我国西南部各省区,在北方即使是在室内莳养,亦因土壤的盐碱度、温度、湿度、营养、光照等调整不好,一般说来都不太适应,不是不开花,就是枯死。然而,此种高寒野生兜兰则不然, 相似文献
66.
67.
68.
cpDNA psbA-trnH基因被认为是被子植物叶绿体基因组中变异位点最多的序列和进化速率最快的叶绿体间隔子之一,该序列可运用于药材种或品种、产地鉴定、系统进化分析。为了更好地了解兜兰属植物的特征和系统进化研究价值,本研究通过建立硬叶兜兰PCR扩增反应体系,对其叶绿体转录间隔基因(psbA-trnH)扩增效果和测序变异进行研究。结果表明,采用60 ng/10μL的DNA模板、2.5 mmol/L的MgCl2、各0.5μmol/L的引物浓度、0.6 U/10μL的DNA聚合酶和0.3 mmol/L dNTPs,退火温度为58.8℃的反应体系有较好的扩增效率,平均测序成功率为53.03%。该基因长度为684~955 bp,平均长度为835 bp,长度变异系数为9.32%,共检出49个核苷酸变异位点,该基因在种水平的变异较小,在亚科间有不同程度的变异。硬叶兜兰的psbA-trnH序列在居群水平上表现出一定的变异,但平均测序成功率不高,仅为53.03%,在一定程度上限制其应用。 相似文献
69.
以同色兜兰为试材,采用RT-PCR和RACE方法从花中获得一个兜兰查尔酮合酶基因(chalcone synthase,CHS)的cDNA全长,命名为PcCHS,GenBank登录号JQ030889。序列分析表明,PcCHS全长1 424 bp,包含106 bp的5′非编码区、133 bp的3′非编码区和一个长度为1 185 bp编码394个氨基酸的开放阅读框。氨基酸序列分析显示,PcCHS具有CHS家族保守的功能活性位点和特征多肽序列。序列比对表明,PcCHS与兰科植物的蝴蝶兰、文心兰和石斛兰等的CHS蛋 相似文献
70.
亨利兜兰茎尖诱导与离体快繁试验 总被引:1,自引:0,他引:1
以亨利兜兰的侧芽为试验材料,选择适宜的灭菌方式及筛选出较佳培养基,提高茎尖诱导率。研究基本培养基及激素浓度对继代增殖的影响。结果表明:适合兜兰侧芽的灭菌方式是将75%酒精倒入小烧杯浸泡1 min,无菌水冲洗3次进行消毒处理;倒入0.1%升汞浸泡约5 min,放入0.1%克拉霉素的溶液中5 min,再次放入0.1%升汞浸5 min,用无菌水冲洗5次,然后剥去外层,把5~7 mm茎尖接入培养基中。茎尖诱导培养基以Heller+6-BA 2 mg/L+NAA 0.2 mg/L+C 0.5在继代培养中,试管苗在培养基1/2 MS+6-BA 0.2 mg/L|+NAA 2 mg/L+10%yz+C 2中,丛生芽增殖为佳,增殖倍数为3.50。壮苗生根以1/2 MS+NAA 1+10%土豆汁+C 2为好。 相似文献