鹅细小病毒病的实验室诊断   总被引：1，自引：0，他引：1  

赵丽荣  张桂红  廖明 《畜牧兽医科技信息》2008,(8)

鹅细小病毒病,在我国又称小鹅瘟,是由鹅细小病毒(Goose Parvovirus,GPV)引起的一种高发病率和高死亡率的高度接触性传染病。该病主要感染1月龄以内雏鹅,雏番鸭。GPV是细小病毒科、细小病毒属、无囊膜的单链DNA病毒。  相似文献   

鹅细小病毒QY株的生物特性研究     

李惠敏  李福伟  张桂红 《水禽世界》2011,(1):32-35

本研究的病毒是从广东患病鹅的小肠组织中分离的,初步鉴定为小鹅瘟病毒(Goose parvovirus,GPV),命名为QY/05后,对病毒的生物学特性进行了鉴定。病料经过处理后,接种12日龄非免疫鹅胚,传代,发现病毒对鹅胚的平均致死时间为3～4d,胚体全身出现较为严重的出血点。病毒接种鹅成纤维细胞和番鸭成纤维细胞,显微镜下可见细胞圆缩、脱落、折光性增强等明显的细胞病变。鹅胚尿囊液经梯度离心后,磷钨酸负染,电镜下可见明显细小的病毒样粒子。这株小鹅瘟病毒尿囊液对鹅胚的EID50为10-3.67/0.3ml。对鹅胚成纤维细胞的TCID50分别为2-5.425/0.1ml。感染一个病毒最小致死量的鹅胚平均死亡时间(MDT)分别为96h。提取DNA后,PCR扩增,在阳性对照处扩增出需要的目的条带。研究结果表明,该分离毒株为典型的鹅细小病毒(Goose Parvovirus,GPV)。  相似文献   

雏鸡贫血因子和细小病毒     

Mcfe.  JB 卢建国 《国外畜牧学(猪与禽)》1991,(2):62-63

关于细小病毒细小病毒(Parvovirus)被发现已有好多年了。侵害人和家畜、家禽的细小病毒都各不相同。这类病毒的大小约为22～25毫微米,含有一条单链直线状的 DNA,其在氯化铯中的密度为每立方厘米1.4克。有些细小病毒可独立生活,称为“自由生活细小病毒”;其他细小病毒则只是在存在腺病毒的情况下才有活力,这些就被称为腺病毒依赖性细小病毒。尚未发现腺病毒依赖性细小病毒可引起疾病,但“自由生活细小病毒”则可引起多种重要疾病,如猪的繁殖障碍、幼犬的心脏病和成年犬的腹泻,以及鹅的 Derzsy's 病。  相似文献   

应用SPA协同凝集试验快速检测鹅细小病毒     

黄伟  佘永建  周光荣  胡世君  周秀富 《畜牧与兽医》1988,(5)

<正> 鹅细小病毒(Goose Parvovirus简写GPV)及其导致的鹅细小病毒病(小鹅瘟)的快速检测及诊断技术,迄今未见文献详细报道。实践及研究工作都迫切需要一个快速、特异而简便的检测技术。  相似文献   

小鹅瘟病毒蛋白质的研究概况     

葛凯  王桂军  李培英  夏伦斌  陈习中  左瑞华 《山东畜牧兽医》2010,31(12):80-83

小鹅瘟是雏鹅的一种急性或亚急性败血性传染病,其病原体是小鹅瘟病毒（Gosling Plague virus,GPV）,即鹅细小病毒（Goose Parvovirus,GPV）。该病是我国学者方定一于1956年首次在江苏扬州发现,60年代后,在欧洲、亚洲等国家相继报道该病的发生与流行。  相似文献   

动物博卡病毒研究综述     

张烨健 《上海畜牧兽医通讯》2014,(5):23-24

<正>当前对细小病毒病毒科(Parvoviridae)的病毒进行分类时,可以进一步细分为2个亚科,即感染脊椎动物的细小病毒亚科(Parvovirinae)和感染无脊椎动物的浓病毒亚科(Densovirinae)。细小病毒亚科可以进一步分为5个属,分别是细小病毒属(Parvovirus)、嗜红细胞病毒属(Erythrovirus)、依赖病毒属(Dependovirus)、阿留申病毒属(Amdovirus)  相似文献   

小鹅瘟病毒荧光定量PCR检测方法的建立   总被引：2，自引：0，他引：2  

付薇  潘杰  龙剑明  朱伟  胡晓静  冯淑萍  何丹  熊毅 《上海畜牧兽医通讯》2008,(6)

小鹅瘟是由鹅细小病毒（Goose Parvovirus，GPV）引起的雏鹅和雏番鸭的一种急性或亚急性、败血性传染病。该病主要侵害3～20日龄小鹅，以渗出性肠炎、肝脏、肾脏、心脏等实质器官炎症为主要特征。该病传播快，发病率和死亡率高，是严重危害养鹅业的重要传染病。  相似文献   

鹅细小病毒研究进展   总被引：2，自引：0，他引：2  

刘洪雨  王君伟  张君  刘玉芬  董飞 《畜牧兽医科技信息》2005,(8):53-54

鹅细小病毒（Goose Parvovirus，GPV）主要引起1月龄雏鹅和雏番鸭的细小病毒病，称小鹅瘟或Derzsy’s病。该病是一种传播快、死亡率高的高度接触性传染病。对10日龄雏鹅发病率和死亡率可达100％，在易感群中的致死率高达70％。该病以渗出性肠炎、小肠粘膜表层大片坏死脱落、肠道栓塞为特征性病变，是目前危害养鹅业的主要疾病之一。鹅细小病毒病最早是由我国学者方定一于1956年在扬州发现，并于1961年用鹅胚分离到该病毒。近年来，本病在世界各地均有不同程度的流行，广泛发生于中国、欧洲各国、以色列、越南和日本的家鹅和番鸭。  相似文献   

鹅细小病毒HG5/82株的分离鉴定及生物学特性的研究   总被引：20，自引：0，他引：20  

李桂霞  刘胜旺  孔宪刚  谷守林  冉多良 《中国预防兽医学报》2005,27(3):196-201

本研究通过对1982年黑龙江某鹅场发生的鹅细小病毒病疑似病例的肝病变组织病毒分离,进行回顾性研究.将肝脏加PBS研磨后,-70℃/37℃反复冻融三次,除菌过滤后接种12日龄鹅胚.发现病毒对鹅胚的致死时间为5～6 d,胚体体表有轻微出血点.鹅胚尿囊液经磷钨酸染色,可见具有典型特征的细小病毒粒子.将该病毒尿囊液在12日龄鹅胚中连续传16代,随着传代次数的增加,胚体多集中在3～4 d死亡.病毒传至第三代时死亡胚体头、颈、背部出现较为严重的出血点,体表有水肿.第五代病毒尿囊液(命名为HG5/82)对12日龄鹅胚的ELD50为10-5.92/0.1 mL.将20只12日龄雏鹅分为三个试验组和一个阴性对照组,各组分别接种鹅胚尿囊液104.92ELDso、103.92ELD50、102.92ELD50及生理盐水,发现雏鹅接种HG5/82后4 d出现轻微腹泻,随后恢复正常.用套式PCR检测雏鹅肛拭子病毒的体外排放情况.发现三个试验组在接种病毒后1～20 d用套式PCR均可检测到病毒.对照组及试验组接种后20～56d没有检测到病毒.将套式PCR产物进行序列测定并于参考毒株进行比较,表明该序列具有GPV相应区域的共同分子特征,与GPV参考毒株B的相应序列同源性达93.6%.本研究结果表明,该分离毒株为典型的鹅细小病毒(Goose Parvovirus,GPV),对雏鹅的致病力较弱.  相似文献   

小鹅瘟研究进展     

甘军纪  魏平华 《养禽与禽病防治》2012,(10):38-42

小鹅瘟（Gosling plague,GP）是由鹅细小病毒（Goose Parvovirus,GPV）引起雏鹅和雏番鸭的一种高度接触性和致死性疾病,是目前危害水禽业健康发展的最严重的传染病之一,可造成严重的经济损失。小鹅瘟由方定一教授于1956年在扬州市首先发现,1961年从病死雏鹅体中分离到病毒,并对病毒的各种特性及特异性防治制剂进行深入系统的研究^[1-4]。  相似文献   

一例犬细小病毒的诊治     

潘小成 《甘肃畜牧兽医》2017,47(9)

犬细小病毒(Canine Parvovirus,CPV)是一种由犬细小病毒引起的急性、以出血性肠炎或化脓性心肌炎为主要特征的犬科和鼬科动物重要传染病。本文从一例犬细小病毒性肠炎的诊治入手,介绍了犬细小病毒病的综合防治方法,以供参考。  相似文献   

雏鹅感染小鹅瘟的诊断     

肖学明  ;王璇  ;李干洲 《上海畜牧兽医通讯》2014,(5):102-102

<正>小鹅瘟(Gosling plague,GP)是由小鹅瘟病毒或称鹅细小病毒(Goose Plague virus或Goose Parvovirus,GPV)引起的主要侵害30日龄以内雏鹅和雏番鸭的一种急性接触性传染病。该病以急性肠炎及肝、肾、心实质脏器败血性病变为特征,具有较强的传染性和较高的死亡率,是危害和威胁养鹅业最重要的传染病之一。2013年3月,贵州省某肉鹅饲养场的5日龄雏鹅患病,经临床诊断、病理剖检、  相似文献   

鹅星状病毒、鹅细小病毒双重PCR检测方法的建立及初步应用     

苗艳  朱庆贺  陈亮  兰世捷  冯万宇  李丹  黄宝银  沈思思  史同瑞 《中国兽药杂志》2021,55(2):1-5

为快速鉴别诊断鹅星状病毒(GoAstV)和鹅细小病毒(GPV),根据GoAstV和GPV基因序列保守区域设计了两对特异性引物,通过PCR扩增目的片段并构建重组质粒,建立了一种可同时检测这两种病毒的PCR诊断方法.该方法能够特异性扩增出两种病毒的相应片段,而对鹅副粘病毒(GPMV)、鹅流感病毒(GAIV)、鹅腺病毒(GA...  相似文献   

番鸭细小病毒琼扩抗原研制及初步应用   总被引：8，自引：1，他引：7  

何海蓉  季明  朱国强 《中国预防兽医学报》2000,22(1):59-60

应用番鸭细小病毒鹅胚适应毒Ｍ９１毒株接种易感鹅胚,收获鹅胚尿囊液毒经浓缩后制成琼扩抗原。此抗原与抗番鸭细小病毒免疫血清和鹅细小病毒免疫血清有共同交叉反应并成功应用于番鸭细小病毒疫苗的免疫检测。  相似文献   

我国猪博卡病毒的流行现状及检测技术     

《养猪》2017,(2)

<正>猪博卡病毒(PBo V)属于细小病毒科(Parvovirus)细小病毒亚科(Parvovirus)博卡病毒属(bocavirus),为无囊膜的单股DNA病毒,病毒粒子大小为25~30 nm,呈正二十面体结构。病毒基因组全长5.2 kb,编码3个主要的开放阅读框(ORF1~3),其中ORF1编码非结构蛋白NS1,ORF2编码衣壳蛋白VP1和VP2,  相似文献   

鸭抗鹅细小病毒抗血清的制备     

刘大鹏  马波  王君伟 《黑龙江畜牧兽医》2012,(1):122-124

为了研究鸭抗鹅细小病毒抗血清对鹅细小病毒病的防治效果,试验采用鹅细小病毒98E株鹅胚胚毒(活毒)免疫成年鸭,检测其抗体效价和并描绘抗体消长规律,利用琼扩效价为1∶32的鸭抗鹅细小病毒抗血清进行鹅细小病毒病预防和治疗试验。结果表明:首免第1周即可在血清中检测到抗体,加强免疫后第1周血清抗体琼扩效价即达到1∶128;攻毒后第25天,在预防试验中雏鹅死亡率为0,在治疗试验中雏鹅死亡率为56%。说明鸭抗鹅细小病毒抗血清对雏鹅细小病毒病的防治具有很好的效果。  相似文献   

小鹅瘟的实验室诊断技术   总被引：3，自引：0，他引：3  

郭兴福 《畜牧兽医科技信息》2005,(8):69-69

鹅细小病毒（Goose Parvovirus，GPV）主要引起4-20日龄雏鹅和雏番鸭的高致死性疾病，称为小鹅瘟或Derzsy＇s病。本病以消化道，尤其是小肠部位典型纤维素性栓塞病变为特征，发病率和死亡率可达70％-100％，是危害养鹅业的主要疾病之一。早在1956年，我国学者方定一教授首先发现了此病，认为其病原是鹅细小病毒，并将该病命名为小鹅瘟（gosling plague，GP）。小鹅瘟的病理变化与1998年程安春等报道的雏鹅新型病毒性肠炎（gosling new type viral enteritis，GNTVE）极为相似，病理变化都表现为严重的广泛性卡他性肠炎。但是，小鹅瘟一旦与鹅副粘病毒病、鸭瘟、  相似文献   

新型鹅细小病毒研究进展     

卞国志  马海彬  罗梦萍  龚凤平  王贵平  廖明  袁建丰 《中国动物传染病学报》2019,(4):102-107

鸭细小病毒病是由鹅细小病毒(Goose parvovirus,GPV)或番鸭细小病毒(Muscovy duck parvovirus,MDPV)引起的一种传染病。经典MDPV和GPV毒株引起的病鸭主要症状为腹泻、脚软、渗出性肠炎,三周龄内雏鸭感染发病率和死亡率都很高。但是2008年下半年以来,福建省、浙江省、安徽省及江苏省等地的雏半番鸭和樱桃谷鸭陆续出现一种新型细小病毒病,该病发病率10%~30%,病死率低于3%,临床症状主要为软脚、短嘴和生长障碍。通过对该病病原进行全基因组测序及系统发育树分析,结果发现该病原与鹅细小病毒亲缘性很近。本文通过比较新型鹅细小病毒(Novel goose parvovirus,N-GPV)与经典的MDPV和GPV在基因组、感染宿主范围和致病性的区别,为新型鹅细小病毒病的防控提供理论依据。  相似文献   

水禽细小病毒基因重组研究进展     

《畜牧与兽医》2017,(2):112-114

水禽细小病毒包括鹅细小病毒(goose parvovirus,GPV)和番鸭细小病毒(muscovy duck parvovirus,MDPV)。GPV可感染鹅和番鸭而MDPV仅能感染番鸭,给世界各地的水禽养殖业带来了巨大的经济损失。水禽细小病毒基因组曾被认为进化率较低,其适应性进化主要是通过点突变累积的方式来进行的。然而,最近的研究结果表明,基因重组在水禽细小病毒的进化过程中扮演着极其重要的角色,并由此产生了新的水禽细小病毒。本文综述了在水禽细小病毒基因重组领域的最新研究成果,为对水禽细小病毒的认识及防控带来有益的帮助。  相似文献   

鹅细小病毒检测技术的研究进展（续完）     

钱钟  李群  范娟  李玉和  宋庆庆 《国外畜牧学(猪与禽)》2013,(12):96-97

上期回顾：随着现代生物学技术的发展,越来越多的新型诊断技术不断出现,也为更快速、敏感和特异性地诊断鹅细小病毒（Goose Parvovirus,GPV）感染奠定了基础,上文介绍了琼脂糖凝胶沉淀试验、免疫酶琼脂扩散试验、病毒中和试验、酶联免疫吸附试验、免疫荧光诊断法、反向间接血凝试验、精子凝集试验、胶乳凝集试验等8项血清学诊断技术。  相似文献