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利用血清中和试验(VN),酶联免疫吸附实验(ELISA)和琼脂扩散沉淀试验(AGP)对IBDV血清Ⅰ型和血清Ⅱ型抗体进行鉴别检测。被检血清来自用活毒攻毒鸡和用灭活油佐剂疫苗免疫鸡,血清Ⅰ型和血清Ⅱ型两者之间抗体的差异用VN试验很容易鉴别检出,但用ELISA方法却不能区分两者之间的差异。AGP试验更不能令人满意。目前用于检测IBDV抗体水平的方法主要有VN、AGP和ELISA等。VN试验不仅可鉴别检测血清Ⅰ型和血清Ⅱ型IBDV抗体,而且可鉴别检测同一血清型内不同毒株的抗体。ELISA也同样用于检测鸡的IBDV抗原和抗体,并被广泛应用于测定大型鸡场IBDV的免疫状态。此报道的主要目的是对比ELISA,AGP试验和VN试验检测IBDV血清Ⅰ型和血清Ⅱ型特异性抗体之间差异的敏感性。 相似文献
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猪口腔液应用于检测猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)抗体监测在国内尚处于起步阶段。通过研究在猪场利用猪口腔液监测商品猪的PRRS抗体,并同时采集血液,比较口腔液和血液中PRRS抗体水平,进而为猪PRRS抗体监测提供新思路。对母猪和仔猪免疫PRRS弱毒疫苗,免疫后分不同时间段分别进行耳缘静脉采血和使用自制口腔液采样套装采集口腔液。然后利用2种ELISA试剂盒分别检测口腔液和血液PRRS抗体。结果表明,利用商品化ELISA试剂盒进行口腔液和血液中的PRRS抗体水平检测发现其具有相关性,尤其是免疫6周后,使用2种试剂盒检测的口腔液和血清中PRRS抗体结果符合率可达100%,故可选择测定免疫6周后口腔液抗体用于PRRS免疫效果评价。所以,猪口腔液采样是一种实用、有效的猪群PRRS抗体监测方法,可根据监测需求确定监测方案。 相似文献
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猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)给世界养猪生产造成了巨大经济损失。对PRRS的精准检测以及疫苗的科学使用是临床PRRS防控的重中之重。为此,本文综述了PRRS检测技术和疫苗研发进展,以期为临床PRRS综合防控提供依据。目前临床上检测PRRS的主要技术包括血清抗体ELISA检测以及各种类型的RT-PCR检测技术。ELISA检测以评价疫苗免疫效果或野毒感染情况为主要目的,RT-PCR检测以临床诊断及调查野毒株类型为主要目的。在疫苗方面,目前市场上主要有活疫苗、灭活苗、亚单位疫苗、DNA疫苗以及载体疫苗等不同类型的单苗以及联苗。其中:活疫苗保护效果较好,但交叉保护不强;灭活苗安全性较高,但免疫效力较差;亚单位疫苗可用于妊娠晚期;DNA疫苗可增强活疫苗的保护效果;载体疫苗虽具有部分保护力,但未进行实际应用。目前依旧没有完全符合国际新一代标准的PRRS疫苗上市。因此,通过科学检测以及将生物安全和合理的疫苗接种结合起来,进行田间毒株的检测和基因分析,进而选择相应基因型毒株疫苗进行免疫,对控制农场以及地区的PRRS具有非常重要的作用。 相似文献
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猪繁殖--呼吸综合症(PRRS)抗体免疫金标快速检测试纸的研制与应用 总被引：11，自引：1，他引：11
应用酶联免疫吸附原理和胶体金层析技术，在玻璃纤维和硝酸纤维素膜的检测线和对照线上分别喷上胶体金PRRSV，PRRSV和兔抗PRRS抗体，从而制作成猪PRRS抗体免疫金标试纸，用该试纸与PRRS—ELISA试剂盒分别对30份猪血清及血液样品进行抗体水平检测，结果完全一致。说明金标试纸法是一种微量、特异、简便和结果容易判定的新的检测方法，非常适用于基层兽医站和猪场，特别是进行现场检测和开展大规模疫情普查时使用。 相似文献
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由于PRRS病毒感染的临床症状与其它病毒性或细菌性病原感染的临床症状相似,因此PRRS病毒感染的确诊需要进行实验室诊断。目前可用的血清学检测方法包括酶联免疫吸附试验(ELISA)、血清病毒中和(SVN)试验和间接荧光抗体(IFA)检测。这些试验的阳性结果只能表明猪曾经自然感染或接种过该病毒的疫苗,而不能判断猪是否仍旧感染。其它可用的检测方法实际上是确定该病毒是否存在,这些方法包括:免疫组织化学染色(Immunohistochemistry Staining,IHC)、荧光抗体染色法(Fluorescent Antibody Staining,FA)、聚合酶链式反应(Polymerase Chain Reaction,PCR)和病毒分离(VirusIsolation,VI)。虽然阳性检测结果能说明样本中存在病毒,但阴性检测结果并不一定说明被检猪没有感染病毒。正确地选择并处理样本、检测方法的敏感性都有助于提供可靠的检测结果。没有任何一种血清学检测方法可以区分猪感染的是PRRS病毒野毒株或疫苗株。病毒的基因测序可以预测PRRS病毒两种毒株之间的亲缘关系以及它们与疫苗株之间密切性。基因测序不能预测某一种疫苗是否能成功预防这种疾病。限制性片段长度多态性(Restriction Fragment Length Polymorphism,RFLP或"切割模式")作为PRRS病毒的一种诊断手段价值有限。由PRRS血清学阳性母猪所产的仔猪,在3～16周龄前血清学检测仍会保持阳性。转阴的确切时间因母猪阳性的水平以及所采用的血清学试验类型的不同而异。由于猪体内的PRRS病毒抗体不能终生存在,一般建议青年猪(而非种猪)应进行监测,以确定猪群的PRRS病毒感染状态。 相似文献
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在安徽部分地区采集了14个猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)免疫猪场和13个非PRRS免疫猪场不同猪群血清样品743份,应用ELISA方法检测PRRSV抗体.结果显示,未免疫猪场PRRSV抗体平均阳性率为31.17%,猪场阳性率为76.92%;免疫PRRS猪场抗体平均阳性率为62.99%.通过SPSS3.0软件数据分析表明,PRRS免疫猪场与未免疫猪场PRRS抗体阳性率差异极显著(P<0.01),提示安徽省规模猪场存在PRRSV隐性感染. 相似文献
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为评估猪繁殖与呼吸综合征（porcine reproductive and respiratory syndrome,PRRS）弱毒活疫苗的免疫效果,本研究在两个小型猪场各选取两窝仔猪,在免疫接种猪繁殖与呼吸综合征病毒（porcine reproductive and respiratory syndrome virus,PRRSV）弱毒活疫苗后不同时间采集血清,应用RT-PCR检测PRRSV核酸,应用N-ELISA和G-ELISA两种试剂盒检测PRRSV抗体。结果发现,免疫前0 d可以从仔猪血清中检测到PRRSV野毒株核酸,可持续到免疫后30 d;相对应的母猪在免疫前0 d可从血清中检测到PRRSV野毒株核酸。试验仔猪在免疫前0 d未能检测到PRRSV抗体,但在免疫后30～150 d均可检测到PRRSV抗体,其中N-ELISA试剂盒的阳性检出率在免疫后30、60 d高于G-ELISA试剂盒的阳性检出率,而在免疫后120、150 d则低于G-ELISA试剂盒的阳性检出率。使用两种ELISA试剂盒共同检测216份血清样品,检测结果的总体符合率为95.83%;配对χ2检验,P>0.05,两者差异不显著;Kappa值为0.87,属于极强一致性;两者相关系数r为0.605,具有显著线性相关。表明免疫接种弱毒活疫苗可以有效清除野毒感染猪群中的野毒株,N-ELISA和G-ELISA两种ELISA试剂盒均可用于评估弱毒活疫苗的免疫效果。 相似文献
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《中国预防兽医学报》2017,(5)
为评估猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)弱毒活疫苗的免疫效果,本研究于规模猪场选取具有母源抗体的仔猪,接种PRRS弱毒活疫苗后不同时间采集血清,应用RT-PCR检测PRRS病毒(PRRSV)核酸,应用N-ELISA和G-ELISA两种试剂盒检测PRRSV抗体。结果显示,在免疫接种后60 d内可在实验仔猪血清中检测到疫苗株核酸,而在整个实验期间未能检测到野毒株核酸。仔猪在免疫前具有较高的母源抗体,阳性率达到100%,此后逐渐下降,在免疫后第28 d/60 d(第2次试验/第1次试验)降到低点后又稳步升高,从免疫后第60 d/90 d到150 d试验结束时阳性率均达到100%。应用两种ELISA试剂盒同时检测329份血清样品,检测结果的符合率为96.96%;配对χ~2检验,p0.05,两者差异不显著;Kappa值为0.81,属于极强一致性;两者相关系数r为0.794,具有显著线性相关。本研究结果表明,高水平母源抗体猪群接种弱毒活疫苗后取得良好的免疫效果,可选用N-ELISA或G-ELISA试剂盒进行免疫效果评估。 相似文献
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为了解南平市延平区规模化猪场猪瘟（Clssical Swine Fever,CSF）和猪繁殖与呼吸综合征（Porcine reproductive and respiratory syndrome,PRRS）的免疫水平，采用酶联免疫吸附试验（ELISA）方法对2019-2022年收集到的1 926份猪血清进行CSF和PRRS抗体检测。结果发现2019-2022年CSF抗体阳性率总体在95%以上，相比之下，PRRS抗体阳性率存在波动，其阳性率总体也在83%以上；对春秋两季猪群CSF和PRRS抗体阳性率检测显示，CSF和PRRS抗体阳性率在春秋两季差异均不显著（P>0.05），然而2种疫病的抗体阳性率在春季普遍较高。说明猪场除了重点加强PRRS的免疫防控，也要特别注重秋季对CSF和PRRS的免疫防控来减少猪场损失。 相似文献
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为评价不同检测方法检测的口蹄疫疫苗抗体效价与免疫保护率的相关性,使用O型液相阻断ELISA、正向间接血凝试验、VP1结构蛋白抗体ELISA三种检测方法对免疫不同类型O型口蹄疫疫苗的60头猪进行血清抗体跟踪测定,免疫21 d后,分别用OZK/93和O/(XJ/10-11/MYA/98)毒株进行攻毒保护实验.数据统计和分析结果显示,0型液相阻断ELISA试验测定的抗体效价与攻毒保护率存在着极显著的正相关性(P＜0.01),相关系数为0.75;正向间接血凝试验测定的抗体效价以及VP1结构蛋白抗体ELISA法测定的S/P值与攻毒保护率之间均不存在线性相关关系(P＞0.05).试验表明,O型液相阻断ELISA抗体检测方法可作为田间猪O型口蹄疫疫苗免疫效果的评价方法. 相似文献
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传染性法氏囊病病毒检测系统的建立 总被引：4，自引：0，他引：4
为了建立传染性法氏囊病病毒(IBDV)检测系统,本试验在同一个试验技术平台上对9种IBDV检测方法进行了比较分析.IBDV野毒株盲传4～5代可适应于鸡胚和鸡胚成纤维细胞,死亡胚体水肿、出血,病变细胞圆缩、脱落.4个血清Ⅰ型1BDV毒株,用交叉中和试验可进一步分为3个血清亚型.用RT-PCR/SSCP技术分析4个毒株,扩增产物的电泳迁移率有差异.AGP、间接ELISA、夹心抑制ELISA以及中和试验等4种方法同时检测不同来源血清样品中的IBDV抗体,其他3种方法比AGP具有更高的敏感性,敏感度相差104倍.用AGP检测法氏囊组织样品,抗原效价可达到1:10,而细胞培养物和病鸡粪便则没有出现沉淀线;3种样品用夹心ELISA、RT-PCR、cDNA探针斑点杂交、RT-PCR/SSCP检测以及病毒分离等5种方法检测,均为阳性. 相似文献
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1997-2006年,用ELISA检测方法对广东省猪群PRRS抗体进行跟踪监测.1997-1999年,全省猪场均未开展PRRS疫苗免疫,猪场抗体平均阳性率分别为17.69%、29.09%、38.42%;2000-2005年,全省猪场逐渐使用PRRS疫苗,抗体平均阳性率分别为40.68%、46.47%、54.14%、55.37%、55.72%、73.03%;2006年对57个猪场1747份血清进行检测,其中85.3%的中大规模场已进行PRRS免疫,抗体平均阳性率为79.8%;82.6%的小规模、个体场未进行PRRS免疫,场阳性率为94.74%,抗体平均阳性率为70.29%.10年来的监测结果表明,广东省猪场遭受PRRSV感染日益严重,大部分猪场存在PRRSV感染.随着PRRS危害性的加重,多数中大规模猪场加强了免疫,但部分规模场和绝大部分小规模、个体猪场仍未做好PRRS的免疫工作.因而,加强PRRS的防控,特别是免疫工作,仍是目前我省猪场的一个重要任务. 相似文献
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猪繁殖与呼吸综合征的ELISA抗体检测结果分析与应用 总被引：1，自引：1，他引：0
本研究应用ELISA方法共检测25个猪场26个猪群507份血清的PRRS抗体水平,应用统计学方法分析各猪群的检测数据,结合猪群临床表现和病原污染情况的流行病学调查结果,可将猪群分为无PRRSV污染,临床健康;PRRS病毒污染,临床稳定;PRRS病毒污染,临床发病且控制困难等3种流行模式,并提出了应用猪群PRRS ELISA检测值标准差、个体检测极值及盒须图(Box-and-Whisker Plot)进行分类的具体指标和PRRS分类控制的建议。 相似文献
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本试验应用ELISA法对吉林地区8个猪繁殖与呼吸综合征(PRRS)未免疫猪场和9个PRRS免疫猪场的后备母猪、生产母猪和5~10周龄的断奶仔猪3个猪群进行了猪繁殖与呼吸综合征病毒(PRRSV)抗体检测,结果表明:吉林地区8个PRRS未免疫猪场均受有PRRSV感染,猪场抗体阳性率为100%,猪群抗体阳性率在50%~75%之间,平均阳性率为62.26%;吉林地区9个PRRS免疫猪场猪群PRRSV抗体阳性率在70%~100.00%之间,平均阳性率为87.78%。PRRS未免疫猪场与PRRS免疫猪场猪群抗体平均阳性率相比,差异极显著(P<0.01)。 相似文献
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本试验应用ELISA法对吉林地区8个PRRS未免疫猪场和9个PRRS免疫猪场的后备母猪、生产母猪和5～10周龄的断奶仔猪三个猪群进行了PRRSV抗体检测。结果表明:吉林地区8个PRRS未免疫猪场均受到PRRSV感染,猪场抗体阳性率为100%,猪群抗体阳性率在50%～75%之间,平均阳性率为62.26%;吉林地区9个PRRS免疫猪场猪群PRRSV抗体阳性率在70%～100%之间,平均阳性率为87.78%。PRRS未免疫猪场与PRRS免疫猪场猪群抗体平均阳性率相比,差异极显著(P<0.01)。 相似文献
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采用进口ELISA试剂盒检测规模猪场母猪、保育猪血清中猪瘟、猪蓝耳病、猪伪狂犬病和猪圆环病毒病等的抗体水平.结果表明,被检测规模猪场的猪瘟抗体合格率为65.2%,特别是保育阶段仔猪抗体水平比较低,只有55.3%.伪狂犬病野毒抗体阳性率达19.01%,母猪与保育猪之间差异不大;而伪狂犬病gB抗体阳性率母猪可达92.6%,保育仔猪只有80%.PRRS抗体水平母猪与仔猪之间差异不显著,分别为88.4%和85.9%,这些场都有注射PRRS弱毒苗,说明该疫苗免疫后抗体转阳率比较高.圆环病毒2型的抗体检测阳性率达91.2%. 相似文献